核酸提取原理及常见问题学习教案.pptx

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1、会计学1核酸核酸(h sun)提取原理及常见问题提取原理及常见问题第一页，共37页。第一部分(bfen)：DNA提取方法简介第二部分：DNA提取常见问题、原因分析(fnx)及其对策内容内容(nirng)第三部分：RNA提取方法简介第四部分：RNA提取常见问题、原因分析及其对策第1页/共36页第二页，共37页。q基因组DNA的提取(tq)CTAB法SDS法酚氯仿(lfn)法试剂盒法DNA提取的几种提取的几种(j zhn)方法方法第2页/共36页第三页，共37页。qCTAB法原理(yunl)CTAB，是一种阳离子去污剂，可破碎细胞壁和细胞膜，并与核酸形成复合物。在高盐溶液中(1.4mol/LNaC

2、l)是可溶的,当降低溶液盐浓度到一定程度(0.7mol/LNaCl)时,从溶液中沉淀。通过离心,可将CTAB核酸复合物同蛋白质、中性多糖类物质分开(fnki)。溶解于高盐溶液中的CTAB核酸复合物,加入乙醇可使核酸沉淀,而CTAB则溶于乙醇.注：CTAB溶液在低于15时会形成沉淀析出，因此在将其加入冰冷(bnglng)的植物材料之前必须预热，且离心时温度不要低于15。CTAB法法（植物（植物DNA提取经典方法）提取经典方法）第3页/共36页第四页，共37页。qCTAB提取(tq)缓冲液的经典配方 组份组份 Tris-HCl （pH8.0）EDTA（pH8.0）NaCl CTAB-巯基乙醇巯基乙

3、醇 终浓度终浓度 100 mM 20 mM 1.4M2%(W/V)0.1%（V/V）使用前加）使用前加入入Tris-HCl（pH8.0）提供一个缓冲环境，防止核酸(hsun)被破坏；EDTA螯合Mg2+或Mn2+离子，抑制DNase活性；NaCl提供一个高盐环境，使DNP（脱氧核糖核蛋白）易于溶解。CTAB溶解细胞膜，并结合核酸(hsun)，使核酸(hsun)便于分离；-巯基乙醇是抗氧化剂，有效地防止酚氧化成醌，避免褐变，使酚容易去除第4页/共36页第五页，共37页。n n细胞裂解后释放的植物(zhw)次生代谢产物和多酚类化合物易于氧化,氧化的多酚结合到DNA 分子上而致 D N A 降解；n

4、 n多糖的性质与核酸类似，会与核酸一同沉淀下来，影响植物(zhw)核酸纯度。第5页/共36页第六页，共37页。qCTAB提取缓冲液的改进(gijn)配方 组份组份 Tris-HCl（pH8.0）EDTA（pH8.0）NaCl CTAB PVP-巯基乙醇巯基乙醇 终浓度终浓度 100 mM 20 mM1.4M3%(W/V)2-5%(W/V)1-5%（V/V）使）使用前加入用前加入vPVP（聚乙烯吡咯烷酮）是酚的络合物，能与多酚形成一种不溶的络合物质，有效去除多酚，减少DNA中酚的污染；同时它也能和多糖结合，有效去除多糖。v同时向抽提液中加入还原剂-巯基乙醇，后者能打断多酚氧化酶中的二硫键，使多酚

5、不易(by)被氧化，随后经抽提而去除。改良改良(giling)方法方法 1第6页/共36页第七页，共37页。改良改良改良改良(g(g iling)iling)方法方法方法方法 2 2n n加入核酸分离缓冲液，利用高温加热裂解细胞，去除部分(b fen)杂质，离心得到细胞核；n n针对多糖组织，得到细胞核之后可加入1XPBS清洗2-3次，去除多糖；n n后续使用CTAB裂解液裂解细胞核。n n核酸分离缓冲液：200mM Tris-HCl n n 50mM EDTA n n 250mM NaCln n 2%PVP第7页/共36页第八页，共37页。qCTAB法流程图植物(zhw)材料裂解(liji)

6、液上层(shngcng)溶液液氮研磨抽提细胞裂解干燥溶解离心洗涤酒精沉淀DNA溶液第8页/共36页第九页，共37页。q SDS法原理(yunl)SDS法法SDS是一种阴离子去垢(qu)剂，在高温（5565）条件下能裂解细胞，使染色体离析，蛋白变性，释放出核酸；提高盐(KAc或NH4Ac)浓度并降低温度（冰浴），使蛋白质及多糖杂质沉淀，离心后除去沉淀；上清液中的DNA用酚/氯仿抽提，反复抽提后用乙醇沉淀水相中的DNA。组份组份Tris-HCl（pH8.0）EDTA（pH 8.0）NaCl SDS终浓度终浓度 10 mM 20 mM 0.4M 2%q SDS法DNA提取(tq)缓冲液第9页/共36

7、页第十页，共37页。n nSDS 法操作简单,温和,也可提取到较高分子量 DNA,但所得产物含糖类杂质(zzh)较多n nCTAB法的最大优点是能较好地去除糖类杂质(zzh)第10页/共36页第十一页，共37页。q SDS法流程图动物组织细胞裂解上层溶液组织匀浆抽提干燥溶解离心洗涤酒精沉淀DNA溶液第11页/共36页第十二页，共37页。酚氯仿酚氯仿(l fn)(l fn)裂裂解法解法q苯酚(bn fn)抽提原理：使蛋白质变性，同时抑制了DNase的降解作用。用苯酚处理匀浆液时，由于蛋白与DNA联结键已断，蛋白分子表面又含有很多极性基团与苯酚相似相溶。蛋白分子溶于酚相，而DNA溶于水相。酚的优点

8、：1.有效变性蛋白质；2.抑制了DNase的降解作用酚的缺点：能溶解10-15%的水。最后用氯仿抽提：克服酚的缺点；加速有机相与液相分层；去除核酸溶液中的迹量酚。（酚易溶于氯仿中）用酚氯仿抽提细胞基因组DNA时，通常要在酚-氯仿中加少许异戊醇，减少(jinsho)蛋白质变性操作过程中产生的气泡。异戊醇可以降低表面张力，从而减少(jinsho)气泡产生。另外，异戊醇有助于分相，使离心后的上层含DNA的水相、中间的变性蛋白相及下层有机溶剂相维持稳定。第12页/共36页第十三页，共37页。用乙醇沉淀DNA时，通常要在溶液中加入单价的阳离子，如NaCl或NaAc，Na+中和DNA分子上的负电荷，减少D

9、NA分子之间的同性电荷相斥力，而易于(yy)聚集沉淀。第13页/共36页第十四页，共37页。DNADNA提取提取提取提取(tq(tq)常见问常见问常见问常见问题题题题1.DNA中含有(hn yu)蛋白、多糖、多酚类杂质2.DNA在溶解前，有酒精残留，酒精抑制后续酶解反应3.DNA中残留有金属离子1.重新纯化DNA，去除蛋白、多糖、多酚等杂质2.重新沉淀DNA，让酒精充分挥发(huf)3.增加70乙醇洗涤的次数（2-3次）q问题一：DNA样品不纯，抑制后续酶解和PCR反应。原因对策第14页/共36页第十五页，共37页。1.材料不新鲜或反复冻融2.未很好抑制内源核酸酶的活性3.提取过程操作过于剧烈

10、，DNA被机械打断(d dun)4.外源核酸酶污染5.反复冻融1.尽量取新鲜材料，低温保存材料避免反复冻融2.液氮研磨(ynm)或匀浆组织后，应在解冻前加入裂解缓冲液3.在提取内源核酸酶含量丰富的材料的DNA时，可增加裂解液中螯合剂的含量4.细胞裂解后的后续操作应尽量轻柔5.所有试剂用无菌水配制，耗材经高温灭菌6.将DNA分装保存于缓冲液中，避免反复冻融q问题(wnt)二：DNA降解。对策原因第15页/共36页第十六页，共37页。1.实验材料不佳或量少2.破壁或裂解不充分3.沉淀不完全(wnqun)4.洗涤时DNA丢失1.尽量选用新鲜（幼嫩）的材料2.动植物要匀浆研磨充分；G菌、酵母裂解前先用

11、生物酶或机械方式破壁3.高温裂解时，时间(shjin)适当延长（对于动物细胞、细菌可增加PK的用量）4.低温沉淀，延长沉淀时间(shjin)5.加辅助物，促进沉淀6.洗涤时，最好用枪头将洗涤液吸出，勿倾倒q问题(wnt)三：DNA提取量少。对策原因第16页/共36页第十七页，共37页。qRNA的提取(tq)异硫氰酸胍/苯酚(bnfn)法（如Trizol法）CTAB法试剂盒法RNA提取提取(tq)第17页/共36页第十八页，共37页。q异硫氰酸胍/苯酚(bn fn)法 原理(yunl)：细胞在变性剂异硫氰酸胍的作用下被裂解，同时核蛋白体上的蛋白变性，核酸释放；释放出来的DNA和RNA由于在特定p

12、H下溶解度的不同而分别位于整个体系中的中间相和水相，从而得以分离；有机溶剂抽提，沉淀，得到纯净RNA。第18页/共36页第十九页，共37页。n nTrizol法适用于普通的植物组织、动物(dngw)组织以及真菌和细菌等。第19页/共36页第二十页，共37页。酚类化合物被氧化后会与RNA不可逆地结合(jih)，导致RNA活性丧失及在用苯酚、氯仿抽提时RNA的丢失，或形成不溶性复合物；而多糖会形成难溶的胶状物，与RNA共沉淀下来；萜类化合物和RNase会分别造成RNA的化学降解和酶解。第20页/共36页第二十一页，共37页。n n针对(zhndu)多糖多酚植物，可以采用CTAB法和Trizol法结

13、合的方法，针对(zhndu)性的去除多糖多酚。n n对于富含色素、蛋白和多糖的藻类，可采取试剂盒方法。n n组织量较少的样品，在沉淀时刻加入糖原，增加终浓度等。第21页/共36页第二十二页，共37页。影响RNA提取(tq)的因素q 材料：q新鲜，切忌使用反复冻融的材料q如若材料来源困难，且实验需要一定的时间间隔(jin g)。可以先将材料贮存在TRIzol或样品贮存液中，于80保存q液氮长期保存，80短期保存第22页/共36页第二十三页，共37页。q 样品破碎及裂解：q根据不同材料选择不同的处理方法(fngf)：q培养细胞：通常可直接加裂解液裂解q酵母和细菌：直接液氮研磨，之后用Trizol裂

14、解q动植物组织：先液氮研磨和匀浆，后加裂解液裂解。有些样品如肌肉或者动物脏器需要加入裂解液后进行湿磨，以充分研磨。q为减少DNA污染，可适当加大裂解液的用量第23页/共36页第二十四页，共37页。q 纯化：q在使用(shyng)氯仿抽提纯化时，一定要充分混匀，且动作快速；q经典的沉淀方法，如 LiCl 沉淀等，虽然经济，但操作时间长，易造成 RNA 降解；q异丙醇沉淀，用时短，但所获得的RNA杂质较多；q柱离心式纯化方法：抽提速度快，能有效去除影响 RNA 后续酶反应的杂质，是目前较为理想的选择。第24页/共36页第二十五页，共37页。RNA RNA提取提取提取提取(tq(tq)常见问常见问常

15、见问常见问题题题题q RNA 的降解(jin ji)q OD260/OD280 比值偏低q 总量偏低第25页/共36页第二十六页，共37页。RNARNA降解降解降解降解(jin(jin ji)ji)样品取样以及保存是否得当裂解液的质量外源RNase的污染裂解液的用量不足组织裂解不充分另外某些(mu xi)富含内源酶的样品(如脾脏，胸腺等)，很难避免 RNA 的降解。第26页/共36页第二十七页，共37页。OD260/OD280 OD260/OD280 OD260/OD280 OD260/OD280 比值比值比值比值(bzh)(bzh)(bzh)(bzh)偏低偏低偏低偏低q 蛋白质污染：q不要吸

16、入中间层及有机相，加入氯仿后首先混匀，并且离心(lxn)分层的离心(lxn)力和时间要足够。q减少起始样品量，确保裂解完全、彻底q苯酚残留：q不要吸入中间层及有机相，加入氯仿后首先混匀，并且离心(lxn)分层的离心(lxn)力和时间要足够。第27页/共36页第二十八页，共37页。q 抽提试剂残留：q确保洗涤时要彻底悬浮 RNA，并且彻底去掉(q dio)75%乙醇。q设备限制：q测定OD260 及OD280 数值时，要使OD260 读数在 0.10-0.50 之间。此范围线性最好。q 用水稀释样品：q测 OD 时，用水作为稀释液将导致比值的降低。第28页/共36页第二十九页，共37页。总量偏低

17、总量偏低总量偏低总量偏低n n跟组织本身的RNA丰度有关，一般代谢旺盛的组织RNA得率会比较高。n n解决方案：加入糖原(tn yun)，帮助RNA沉淀n n 多提几管，最后合并溶解。第29页/共36页第三十页，共37页。正常正常正常正常(zhngchng(zhngchng)条带条带条带条带 常见常见(chn jin)的几种的几种RNA条条带带第30页/共36页第三十一页，共37页。植物(zhw)叶片第31页/共36页第三十二页，共37页。水生生物(shngw)和昆虫等“隐裂”现象第32页/共36页第三十三页，共37页。真菌真菌真菌真菌(zhnjn)(zhnjn)和细菌和细菌和细菌和细菌等等等等第33页/共36页第三十四页，共37页。动物动物动物动物(dngw)(dngw)组织组织组织组织第34页/共36页第三十五页，共37页。第35页/共36页第三十六页，共37页。感谢您的观看感谢您的观看(gunkn)。第36页/共36页第三十七页，共37页。