脐血间充质干细胞的分离培养鉴定及诱导分化研究.pdf
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1、-最新资料推荐-1/11 脐血间充质干细胞的分离培养鉴定及诱导分化研究 脐血间充质干细胞的分离培养鉴定及诱导分化研究 摘要目的:分离培养人脐血间充质干细胞(human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells,hUCB-MSC),体外观察其生长特性,并在特定条件下诱导分化,探讨其成脂成骨分化能力。方法:采用沉降法和密度梯度离心结合贴壁培养法自脐血中分离间充质干细胞,倒置显微镜下观察其形态及生长情况;流式细胞仪分析细胞周期并检测细胞表面标志物;用茜素红染色和油红 O 染色分别鉴定其成骨成脂分化能力。结果:纯化的 hUCB-MSC 贴壁
2、生长,呈均一梭形,具有较强的增值能力,流式细胞仪分析 P3 代 hUCB-MSC 稳定表达间充质干细胞表面抗原标志 CD73,CD105 和 CD90 等,不表达造血标志 CD34 和 CD45;成骨诱导后 3 周后细胞茜素红染色阳性;成脂诱导 3 周后细胞油红 O 染色阳性。结论:本实验分离的 hUCB-MSC 具有较强的增殖能力,表达间充质干细胞的表面标记,具有成骨成脂分化潜能。关键词 脐血;间充质干细胞;分化;鉴定 中图分类号Q813.1 文献标识码A 文章编号1008-6455(2019)07-0735-04 间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs),作为
3、一种成体干细胞用于再生医学修复各种间叶组织如骨、软骨、肌肉等,具有广阔的发展空间1-2,目 前应用较为广泛为骨髓间充质干细胞,但由于骨髓取材属有创操作且干细胞随供体年龄增大有老化倾向等问题,在一定程度上限 制其临床应用3。与骨髓间充质干细胞相比,脐血干细胞来源广泛,采集方便,不会对供者造成任何伤害,且有研究显示患者接受异体移植后,脐血来源的 MSCs 显示出更低的免疫原性反应4-5 所以人脐血 MSCs 引起越来越多研究者的广泛兴趣。但是关于间充质干细胞的含量及能否成功体外培养存在很大争议。因此,本实验即探讨 hUCB-MSCs 的分离培养及其生物学特性,以期建立稳定的体外分离培养体系;同时对
4、其体外诱导分化能力也进行深入研究,以期为下一步研究奠定实验基础。1 材料和方法 1.1 材料:所有标本均取自哈尔滨医科大学附属第一临床医学院妇产科顺产及剖宫产的胎儿,孕妇体健,乙肝五项、梅毒等检测均为阴性,胎儿无先天性疾病,取血前征得产妇及家属同意并签署知情同意书。0.25%胰蛋白酶/EDTA、DMEM/F12(美国,Hyclone),胎牛血清 FBS(美国,Gibco),人淋巴细胞分离液(1.077 g/ml,天津 TBD 公司),地塞米松、维生素 C、吲哚美辛、-甘油磷酸钠、-最新资料推荐-3/11 3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(IBMX)和胰岛素均购自美国 Sigma 公司。荧光标记小鼠抗
5、人单克隆抗体:CD45-PE、CD34-APC、CD90-FITC、CD105-FITC 和 CD73-PE 均购自美国 biolegend 公司。1.2 方法 1.2.1 hUCB-MSC 的分离与培养6:经新生儿父母同意,采集新生儿脐血 12 份,每份 50 80 ml,将所采集样本于 4h 内处理。将抗凝脐血用同体积的 PBS 稀释一倍,混匀,再与 37预温的 3%明胶等比混合,室温下静置至血浆与红细胞界面形成后,吸取血浆层,2019 r/min 离心 5 min,收集细胞;用 5 ml DMEM/F12 重悬所得细胞,按 2:1 的体积比加到人淋 巴细胞分离液(1.077g/ml)表面
6、,2019 r/min 离心 20 min,离心后吸取悬于分离液面的白膜层,获得单个核细胞。PBS 洗两次,用 DMEM/F12 培养基(含体积分数为 10%胎牛血清、10 g/L 碱性成纤维细胞生长因子 bFGF、100U/mL 青霉素和 100 g/L 的链霉素)悬浮上述细胞,计数,以 1107cells/ml 浓度接种于 25ml 培养瓶,置于 37,5%CO2 饱和湿度的培养箱中培养。4 天后首次换液,以后每 3 天换液一次。倒置显微镜下观察细胞生长情况。细胞生长至 80%融合时,用 0.25%胰蛋白酶/EDTA 消化,1:1 传代。第一代后细胞生长达到 80%90%时按 1:3 传代
7、。选用生长良好的 P3 代细胞做鉴定。1.2.2 流式细胞仪检测细胞周期:取 P3 代细胞,0.25%胰酶/EDTA 消化,制备单细胞悬液,并调整细胞数为 1106 个,70%冰乙醇固定 30 min,PBS 洗 2 次,40mg/L RNAse 中处理后离心,加入 10g/L 碘化丙啶 0.5ml,染色 30min,流式细胞仪检测细胞周期。1.2.3 hUCB-MSC 表面标志的检测:取 P3 代细胞,在细胞达到 80%融合时,0.25%胰酶/EDTA 消化,制备单细胞悬液,并调整细胞数为 1 106 个,PBS 洗两次,离心,弃上清,加入 0.1mlPBS 重悬,分别加入荧光标记的抗体及同
8、型对照,室温避光孵育 20min。流式细胞仪检测 CD90、CD105 和 CD73、CD45 和 CD34 的表达情况。1.2.4 hUCB-MSC 分化能力检测:成骨诱导:取 P3 代细胞以 5104 个/ml 接种于六孔板,用含 10%FBS 的 DMEM/F12 培养 24h,待细胞贴壁伸展后,实验组换用矿化诱导液(含 10nmol/L-甘油磷酸钠,50 g/ml 维生素 C,110-7mol/L 地塞米松、10%FBS 的 DMEM/F12 培养基),对照组 仅用 10%FBS-最新资料推荐-5/11 的 DMEM/F12 培养基,每隔 3 天换液。镜下观察细胞复层生长并出现黄褐色结
9、节后弃去培养基,PBS 洗 3 次,4%多聚甲醛固定 30min,1%茜素红染色 10min,镜检、照相;成脂诱导:将 P3 代细胞以 5 104个/ml 的密度接种于六孔板,用含 10%FBS 的 DMEM/F12 培养 24h,待细胞贴壁伸展后,换用成脂诱导液(含 0.25 mol/L 地塞米松,0.5mmol/L IBMX,100mmo1/L 吲哚美辛,10 g/L 胰岛素,10%FBS 的 DMEM/F12 培养基),对照组不加诱导剂,每隔 3 天换液。镜下观察细胞内出现脂肪小滴后弃去成脂诱导液,PBS 洗 3 次,4%多聚甲醛固定 15min,油红 O 染色 15min,显微镜下观察
10、、照相。2 结果 2.1 hUCB-MSC 形态学观察:原代培养初期含有多种细胞成分,大部分细胞未贴壁,细胞为圆形或球形血细胞,第 4 天可见散在单个细胞贴壁,呈卵圆形,纺锤形和短梭形,逐渐伸出细胞突起,但无明显扩增;10 天以后细胞体积增大,密度明显增加,少数 MSCs 呈多角形,大部分呈长梭形,细胞突起明显,且向周围伸展呈辐射状和网状生长;细胞培养约 3 4 周可达 80%90%融合即可传代。传代 hUCB-MSC 接种后 6 8h 即可贴壁,细胞均匀散在分布,生长迅速,1 周后可再次传代。随着换液和传代,异质性细胞逐渐被去除,贴壁细胞呈均一的成纤维样细胞,呈旋涡状生长。见图 1。2.4
11、hUCB-MSC 分化能力鉴定:成骨诱导:hUCB-MSCs 成骨诱导 1 周时,细胞形态变化不明显;3 周时可见钙化物形成,茜素红染色可见胞浆中有大量的红色钙化基质沉积,对照组无此变化,见图 3;成脂诱导:hUCB-MSCs 经成脂诱导 1 周,生长明显减慢,细胞形态开始变得丰满,胞 体变大,胞浆丰富,诱导 2 周左右在细胞核周围的胞浆内出现一些折光性强的圆形脂肪小滴。随时间的延长,脂肪滴逐渐增多并融合成大脂肪滴。3 周后固定,1%油红 O 染色可见细胞内有红染脂滴,大小不等,部分脂滴发生融合,主要分布在细胞核周围及其附近,对照组无此变化,见图 3。3 讨论 实验在查阅大量文献的基础上对培养
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