DB34∕T 3399-2019 水产动物病原菌药敏试验和耐药性检测技术规范.docx
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1、ICS11.220B50DB34安徽省地方标准DB34/T33992019水产动物病原菌药敏试验和耐药性检测技术规范StandardforDrugsensitivitytestanddrugresistancetestofaquaticpathogenicbacteria文稿版次选择2019-11-04发布2019-12-04实施安徽省市场监督管理局发布DB34/T33992019前言本标准按照GB/T1.1-2009给出的规则起草。本标准由安徽农业大学提出。本标准由安徽省农业标准化技术委员会归口。本标准起草单位:安徽农业大学、安徽省水产技术推广总站、定远县水务局、明光市水产技术推广站、蒙城县
2、畜牧兽医水产局、安徽海辉水产养殖有限公司、宁国市渔业渔政管理局、定远县海群现代农业发展有限公司、绩溪县农业委员会水产站、望江县水产局、阜南县水产管理局。本标准起草人:彭开松、吴敏、姜守松、范文鲁、赵祖芳、王黎明、贾俊威、付成海、薛贵胜、朱若林、鲍传和、蒋军、魏泽能、檀基良、曹学志、于朝敏。IDB34/T33992019水产动物病原菌药敏试验和耐药性检测技术规范1范围本标准规定了淡水水产动物病原菌药敏试验和耐药性检测的术语与定义、样品采集、病原菌分离与鉴定、纸片扩散法测定抑菌圈直径、微量肉汤稀释法测定最小抑菌浓度、病原菌耐药性检测。本标准适用于淡水水产动物病原细菌药敏试验和耐药性检测。2规范性引
3、用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB4789.2食品安全国家标准食品微生物学检验菌落总数测定GB/T27623.1渔用抗菌药物药效试验技术规范第1部分:常量肉汤稀释法药物敏感性试验WS/T639抗菌药物敏感性试验的技术要求3术语和定义下述术语和定义适用于本文件。3.1活水产动物Liveaquaticanimals具有典型症状和大体病变的活水产动物。3.2冻水产动物Frozenaquaticanimals活水产动物断头处死后装入无菌塑料自封袋,在-20冻存6h12h
4、的水产动物。3.3冰水产动物Iceaquaticanimals活水产动物断头处死后装入无菌塑料自封袋,在湿冰中存放6h12h的水产动物。3.4死水产动物Deadaquaticanimals死后在养殖水体中留存6h12h的水产动物。4样品采集1DB34/T339920194.1采样器材手术剪,镊子,解剖盘,无菌棉试子,无菌塑料自封袋,保温采样箱,乳胶手套,网具。4.2样品数量具有典型临床症状和大体病变的患病水产动物35尾作为分离病菌的样品。如果症状和大体病变复杂,可以适当增加样品数量。4.3样品质量样品质量优劣次序为:活水产动物冰水产动物冻水产动物死水产动物。无法获得前三种样品时,可使用死水产动
5、物。样品数量多或动物个体大时,用无菌棉试子充分吸收样品中的体液或直接蘸取小块组织,保存于采样管。样品在4保温箱或冰盒中运送。5病原菌分离与鉴定5.1样品处置时限送检样品到达实验室后应立即处理,不能存放过夜。5.2分离培养基根据疑似病菌类别,选择预制好的分离培养基(参见附录A和附录B)。5.3病原菌分离5.3.1内脏器官分离法全身系统性感染病例,体表经75酒精消毒后,剪除腹壁(鱼类、两栖类、爬行类)或剥离甲壳(虾、蟹和贝类),暴露腹腔或甲壳下的脏器。无菌摘下肝胰腺或脾脏或肾脏,剪一断面涂布到固体培养基表面,划线法分离病菌。5.3.2体表损伤组织接种法体表或鳃局灶性损伤病例,选新鲜病灶,在损伤与健
6、康组织的交界处,无菌刮取采集约1L的样品,接种到固体培养基表面,划线法分离病菌5.4病原菌物种鉴定利用形态学、生理生化特性和16SrDNA测序等鉴定分离菌。5.5病原菌致病性鉴定经毒力基因检测和本动物回归攻毒试验,确定分离菌的致病性。6纸片扩散法测定抑菌圈直径6.1试验器材纸片扩散法所需试验器材应符合WS/T639的规定。2ATCC29213)。过夜培养的测试菌株用灭菌生理盐水稀释为0.5麦氏浊度(相当于1210cfu/mL),液浓度约为110cfu/mL。细菌工作液最好在30min内用完,否则应存放在冰上。DB34/T339920196.2培养基制备根据细菌鉴定结果,选择相应固体培养基(见附
7、录D),固体培养基厚度为4mm0.5mm。固体培养基用无菌塑料自封袋密封后,可在48放714天,用前在37温箱中除明水。6.3试验菌液制备测试菌株包括临床分离病原菌和质控参考菌株(大肠杆菌ATCC25922、金黄色葡萄球菌8在1560min内用完。6.4试验操作过程灭菌棉试子蘸取上述菌悬液均匀涂布在琼脂表面。在15min之内,将药敏纸片(见附录C)均匀平坦紧贴到平板上(纸片中心间距离至少3cm)。倒置平板并在15min内放到培养箱培养,培养皿叠放不超过5层。培养温度和时间见附录D。6.5试验结果判定培养结束,取出培养皿,放在眼前30cm处,测量抑菌圈直径(单位为mm)。根据折点值(参见附录E)
8、,判断敏感性。如果在培养皿表面仅见单菌落,说明接种量不够,要重新进行试验。7微量肉汤稀释法测定最小抑菌浓度7.1试验器材除将试管替换为96孔微量培养板外,其余所需试验器材应符合GB/T27623.1的规定。7.2培养基制备根据细菌鉴定结果,选择相应肉汤培养基(附录D)。7.3抗菌药物溶液制备抗菌药物批号、效价、有效期和存储条件,必须明确,并按要求存放在48的干燥器内。使用药物储存液配制溶剂(附录C)溶解抗菌药物,制备浓度高于1g/L的抗菌药物储存液,抗菌药物储备液在-20可保存一个月。使用药物工作液配制溶剂(附录C)稀释抗菌药物储存液,制备所需的2倍比稀释的抗菌药物工作液,并在一天内用完7.4
9、细菌工作液制备过夜培养的测试菌株先用灭菌生理盐水稀释为0.5麦氏浊度,再用肉汤稀释100倍,使细菌工作67.5试验操作过程给96孔微量培养板做好标记。第AH行,每两行为一个重复。第110列为测试孔,加入对应浓度的2倍比稀释的抗菌药物工作液,每孔100L。第11列为阳性对照孔,第12列为阴性对照孔,二者均加100L灭菌生理盐水。第111列加细菌工作液100L;第12列加肉汤100L。上述布板完成后,立即从阳性对照孔中取10L菌悬液加到10mL的生理盐水中,混匀后取100L3DB34/T33992019涂布到相应固体培养基表面(见附录D),过夜培养后计数。加盖微量培养板用无菌塑料自封袋密封后,放入
10、培养箱中孵育(培养温度和时间,见附录D)。微孔板的叠层不超过5层。7.6试验结果判定如果7.5中计数的每个培养皿中菌落数量在2080之间,则说明细菌工作液浓度比较合适。细菌平板计数和结果认定方法参照GB4789.2。微量培养板培养结束后,必须同时满足阳性对照孔浑浊且阴性对照孔清亮,试验结果才有效;否则,试验应重做。以清亮测试孔对应的最小药物工作液终浓度为最小抑菌浓度(MIC)。8病原菌的耐药性检测8.1纸片扩散法抑菌圈直径小于耐药性折点直径(附录E),可初步判定该细菌对该药物具有耐药性。8.2最小抑菌浓度法最小抑菌浓度大于耐药性折点浓度(附录E),可初步判定该细菌对该药物具有耐药性。8.3MB
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