乳腺癌HER2检测指南(2023年版)概要解读.docx
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1、105】乳腺癌 HER2 检测指南(2023 版)概要2023-09-01四川病理来源:中华病理学杂志正确检测和评定乳腺癌的HER2 蛋白表达和基因扩增状态对乳腺癌的临床治疗和预后推断至关重要。HER2 检测结果不仅涉及患者是否适合针对HER2 的靶向治疗,并且对内分泌治疗、化疗方案的选择及预后评估起指导作用。乳腺癌HER2 检测指南(2023 版)结合我国实际状况,在乳腺癌HER2 检测指南(2023 版)的根底上,补充相关领域的内容和观点。现摘选其检测方法局部如下。一、检测方法推举承受免疫组织化学(IHC)法检测HER2 受体蛋白的表达水平,应用原位杂交(in situ hybridiza
2、tion,ISH)法检测HER2 基因扩增水平。ISH 包括荧光ISH ( fluorescence insitu hybridization,FISH)和亮视野 ISH。常用的亮视野 ISH 方法有显色ISH(chromogenic in situ hybridization,CISH)和银增加ISH(silverenhanced in situ hybridization,SISH)。本指南推举IHC 与 ISH 相结合的检测策略。二、检测时机及临床病理联系全部乳腺原发性浸润癌都应进展HER2 检测。只要能猎取肿瘤组织,对复发灶或转移灶也应当进展HER2 检测。如HER2 检测结果为不确定
3、,则应使用另一种检测方法进展检测,或对该患者的其他样本进展检测。加强临床病理沟通有助于对HER2 检测结果的正确诠释和对HER2 靶向治疗疗效的客观评价。临床医师和病理医师均需留意HER2 检测结果是否与组织病理学特征相符,如组织学分级为1 级的浸润癌通常为HER2 阴性,包括浸润性导管癌、经典型浸润性小叶癌、小管癌、黏液癌、筛状癌、腺样囊性癌等。如检测结果为阳性,则视为检测结果与组织病理学特征不符合,需要核实诊断或重检测。三、HER2 检测流程乳腺癌标本一般可先经IHC 检测。IHC 3+为 HER2 阳性,IHC 0 和 1+为HER2 阴性。IHC 2+为HER2 不确定病例,需进一步应
4、用ISH 的方法进展HER2 基因扩增状态检测,也可以选取不同的组织块重检测或送条件更好的试验室进展检测。四、组织标本的制备1. 标本类型:(1)手术切除标本;(2)粗针穿刺活检标本;(3)麦默通活检标本。2. 标本固定:全部乳腺癌标本离体后都应尽快固定(1 h 内)。固定时应将标本每隔 510 mm 切开,并可在组织间嵌入纱布或滤纸等物。固定液量与所浸泡组织的比例应足够。固定时间以 672 h 为宜。3. 固定液类型:4中性(磷酸缓冲)甲醛固定液。4. 组织切片:(1)未染色的切片置于室温不宜超过6 周,以防抗原丧失。(2)用于 IHC 染色者切片厚度以 35m 为宜,ISH 法以 45m
5、为宜。(3)完成检测的切片,IHC 和亮视野 ISH 可按常规长期保存,FISH 结果应马上照相存档并于一 20保存,建议至少保存 3 个月备查。(4)各种检测方法均应有HE 染色切片作为比照。五、染色要求与结果判读建议使用我国食品药品监视治理总局认证的检测试剂盒,对自行组配的检测系统则必 须经过严格的内、外部质量把握,建立完善的试验室标准操作程序(SOP),并与权威机构批 准的检测试剂盒进展比对,以保证检测结果的牢靠性。(一) IHC1. 观看程序:应先在低倍镜下观看整张切片,推断染色是否满足及是否存在HER2 表达的异质性。正常乳腺上皮不应消灭强的细胞膜着色。只评定浸润癌的着色状况,导管原
6、位癌的着色不能作为评定对象。观看细胞膜着色的浸润癌细胞的比例及着色强度,假设消灭细胞质或细胞核着色提示IHC 染色效果不抱负或组织处理不佳,建议调整染色条件或更换组织后再行染色。判读时应避开组织边缘及组织处理不佳(如明显挤压)的癌组织。2. 结果判读及留意事项:结果判读标准(按每张切片计;图1,2):0:无染色或10 的浸润癌细胞呈现不完整的、微弱的细胞膜染色;1+:10的浸润癌细胞呈现不完整的、 微弱的细胞膜染色;2+:有两种状况,第一种为10的浸润癌细胞呈现不完整和或弱至 中等强度的细胞膜染色,其次种为10的浸润癌细胞呈现强而完整的细胞膜染色;3+:10的浸润癌细胞呈现强而完整的细胞膜染色
7、。对于2+的病例,应当用ISH 做进一步检测,也可以选取不同的组织块重检测或送条件更好的中心试验室进展检测。当消灭以下状况时HER2 状态为无法判读(indeterminate),包括标本处理不当、严峻的组织挤压或边缘效应、检测失败等。应在报告中注明HER2 状态无法判读的可能缘由,并建议再次猎取样本进展HER2 检测。在乳腺浸润性微乳头状癌和局部有分泌现象的乳腺癌中,有时浸润癌细胞的细胞膜已呈很深的棕褐色,但却并未呈闭环状完整着色,存在确定程度的不连续性和连续胜, 此时至少应视为HER2 2+,并需要行ISH 检测进一步明确HER2 状态。建议在HER2 IHC 检测报告中包括如下内容:患者
8、信息(包括姓名、性别、年龄、门诊住院号)、送检医师姓 名、送检日期、标本信息(包括病理号和蜡块号)、标本部位和类型、抗体信息(克隆号生产 商)、检测方法、是否使用图像分析、比照设置状况、样本量是否适合评估、判读结果(O、 1+、2+、3+)、检测结论(如阳性、不确定、阴性、无法判读)。3. 质量把握:包括抗体的选择、抗原修复方法、染色及其他相关试验室技术,均应严格按SOP 进展。IHC 自动染色系统更易到达标准化,但也应进展严格的比对试验和程序优化,且需要对机器进展定期维护。IHC 染色须设立比照,以不同染色程度的组织芯片作为比照为最正确。被检测切片中癌旁正常乳腺上皮细胞是很好的阴性内比照。利
9、用计算机图像分析有利于推断的准确性和可重复性,但必需经过病理医师确认其结果,且设备使用前必需进展校验。(二) FISHFISH 技术通过荧光标记的DNA 探针与细胞核内的DNA 靶序列杂交。在荧光显微镜下观看并分析细胞核内杂交于DNA靶序列的探针信号,以获得细胞核内染色体(或染色体片段) 上基因状态的信息。目前进展HER2 基因状态检测的探针多为同时含有HER2 基因和该基因所在的第 17 号染色体着丝粒(CEPl7)序列的双探针,也可承受仅含有HER2 基因的单探针。1. 观看程序:应在低倍镜下观看整张FISH 切片,初步推断检测质量以及是否存在HER2 扩增的异质性。要求至少找到2 个浸润
10、癌区域,计数至少 20 个浸润癌细胞。也可以参照 IHC 切片先确定可能存在扩增的浸润癌区域,然后于100 倍物镜下通过特异通道滤光片观看HER2 和CEP17 信号,并进展信号计数和比值计算。2. 结果判读及留意事项:应选择细胞核大小全都、核的边界完整、二脒基苯基吲哚(DAPI)染色均一、细胞核无重叠、信号清楚的细胞。随机计数至少20 个浸润癌细胞核中的双色信号。在观看信号时,应依据状况随时调整显微镜的焦距,准确观看位于细胞核不同平 面上的信号以免遗漏。判读标准(图 35):双探针ISH:(1) 当 HER2CEP17 比值2.0 时,为HER2 阳性;HER2CEP17 比值2.0,但平均
11、 HER2 拷贝数细胞6.0 时也为HER2 阳性。扩增细胞应均质、连续,且占浸润癌的 10 以上。需要留意的是对于HER2CEP17 比值2.0,但平均HER2 拷贝数细胞4.0 的病例是否应当视为ISH 阳性目前尚存确定争议。建议对这局部病例在报告中加以备注,提示目前的生疏争议,建议临床医师参考IHC 检测结果并与患者进展必要的沟通。(2) HER2CEPl7 比值2.0 且平均HER2 拷贝数细胞2.0 时为HER2 阴性。(3) HER2CEP17 比值2.0 且平均HER2 拷贝数细胞4.0 时为HER2 ISH结果不确定。单探针1SH:肿瘤细胞平均HEt2 拷贝数细胞40 为无扩增
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