(2.13)--10. 病毒学的研究方法 2021.ppt
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1、病毒学的研究方法病毒学的研究方法主要内容主要内容一、病毒学研究常用方法二、病毒感染研究一般流程三、理化因子对病毒的作用 组织和细胞培养技术分子生物学方法电子显微镜技术离心技术血清学方法一、病毒学研究常用方法普通离心机:最大转速6000 rpm高速离心机:最大转速为2000025000rpm 超速离心机:转速可达5000080000 rpm 分析性离心机:制备离心机和光学检测系统的结合离心技术离心结束后常需电镜检测纯度 一、病毒学研究常用方法 差速离心法:采用逐渐增加离心速度或低速和高速交替进行离心,使沉降速度不同的颗粒,在不同的离心速度及不同离心时间下分批分离的方法。密度梯度离心:采用甘油,蔗
2、糖,氯化铯配制成抗对流干扰连续密度梯度介质,把病毒粒子和杂质沉淀或浓缩到与它自身密度相等的位置。常用的离心分离方法离心结束后常需电镜检测纯度 在密度均一的介质中由低速到高速逐级离心,用于分离不同大小的细胞和细胞器。在差速离心中细胞器沉降的顺序依次为:核、线粒体、溶酶体与过氧化物酶体、内质网与高基体、最后为核蛋白体。由于各种细胞器在大小和密度上相互重叠,而且某些慢沉降颗粒常常被快沉降颗粒裹到沉淀块中,一般重复23次效果会好一些。差速离心只用于分离大小悬殊的细胞,更多用于分离细胞器。通过差速离心可将细胞器初步分离,常需进一步通过密度梯离心再行分离纯化。A:等速度沉降,B:等密度沉降 1932年Ru
3、ska发明了以电子束为光源的透射电子显微镜(transmission electron microscope,TEM),电子束的波长要比可见光和紫外光短得多,并且电子束的波长与发射电子束的电压平方根成反比,也就是说电压越高波长越短。目前TEM的分辨力可达0.2nm。一、病毒学研究常用方法电子显微镜技术电子显微镜技术一、病毒学研究常用方法主要用于病毒的形态观察、大小测定、病毒的鉴定、病毒粒子三维重构等负染色法超薄切片技术免疫电镜技术冷冻电镜技术 通常以锇酸和戊二醛固定样品,以环氧树脂包埋,以热膨胀或螺旋推进的方式推进样品切片,切片厚度20-50nm,切片采用重金属盐染色,以增大反差.莱卡超薄切片
4、机超薄切片技术负染就是用重金属盐(如磷钨酸、醋酸双氧铀)对铺展在载网上的样品进行染色;吸去染料,样品干燥后,样品凹陷处铺了一薄层重金属盐,而凸的出地方则没有染料沉积,从而出现负染效果,分辨力可达1.5nm左右。肌动蛋白纤维的负染电镜照片负染色法冰冻蚀刻,亦称冰冻断裂。标本置于-100C的干冰或-196C的液氮中,进行冰冻。然后用冷刀骤然将标本断开,升温后,冰在真空条件下迅即升华,暴露出断面结构,称为蚀刻。在电镜下得到的影像即代表标本中细胞断裂面处的结构.冰冻蚀刻人冠状病毒(左)与SARS冠状病毒病毒粒子三维重构模型电镜观察发现痘病毒是整个病毒粒子通过吞噬作用进入细胞的组织培养法 (tissue
5、culture)或细胞培养(cellculture)法 是将离体活组织块或分散的组织细胞加以培养的技术总称,为病毒分离鉴定中的最常用的基本方法。一、病毒学研究常用方法群体培养(左)和克隆培养(右)群体培养:将含有一定数量细胞的悬液置于培养瓶中,让细胞贴壁生长,汇合后形成均匀的单细胞层;克隆培养:将高度稀释的游离细胞悬液加入培养瓶中,各个细胞贴壁后,彼此距离较远,经过生长增殖每一个细胞形成一个细胞集落,称为克隆。一个细胞克隆中的所有细胞均来源于同一个祖先细胞。一、病毒学研究常用方法细胞培养技术原代和次代细胞培养:分离病毒最为敏感 二倍体细胞:用于病毒分离和疫苗制备 传代细胞系:用于病毒的分离鉴定
6、和抗病毒药物筛选研究。常用的细胞系有人宫颈癌细胞(Hela)、传代地鼠肾细胞(BHK21)、人喉上皮癌细胞(Hep-2)、传代非洲绿猴肾细胞(Vero)病毒基因转染细胞系:用于病毒基因调控和抗病毒药物的研究。常用的细胞培养细胞培养技术细胞培养特点 1.细胞的变化细胞的变化有些病毒在细胞内增殖时可引起特有的细胞病变,称为细胞病变效应(CPE)。常见的变化有细胞变圆、聚集、坏死、溶解或脱落等。有些病毒如麻疹病毒、CMV、RSV等 作用于细胞膜,可使邻近的细胞相互融合,形成多核巨细胞或称融合细胞。有些病毒(如狂犬病病毒、麻疹病毒等)可在培养细胞中形成胞浆或核内的包涵体。病毒培养时出现的CPE正常细胞
7、正常细胞细胞病变(Cytopathic effect,CPE)2.2.红细胞吸附红细胞吸附 (hemadsorption,HAd)(hemadsorption,HAd)n 流感或副流感病毒等感染细胞后,由于细胞膜上出现了血凝素(haemagglutinin,HA),具有吸附脊椎动物(豚鼠、鸡、猴等)红细胞的能力,这一现象称红细胞吸附,常用来测定具有HA的粘病毒与副粘病毒的增殖。若有相应的抗血清,则能中和细胞膜上的HA,HAd不再发生,称红细胞吸附抑制试验。3.3.干扰现象干扰现象(interference)(interference)n 某些病毒感染细胞时不出现CPE或其他易于测出的变化(如H
8、Ad),但能干扰在其后感染的另一病毒的增殖。如风疹病毒感染Vero细胞时CPE不明显,但它能干扰后感染的埃可病毒(ECHOV)的增殖,从而阻抑后者所特有的CPE。4.4.细胞代谢的改变细胞代谢的改变 n 病毒感染细胞的结果可使培养液的pH值改变,说明细胞的代谢在病毒感染后发生了变化。这种培养环境的生化改变也可作为判断病毒增殖的指标。噬菌斑:病毒固体培养基上的微生物,产生溶菌现象 107109克隆感染(溶菌不彻底晕圈)。空斑或蚀斑:单层细胞中被病毒感染导致死亡的细胞区叫空斑,一个空斑由一个病毒颗粒感染引起的。不同的病毒引起的空斑形态和大小不同。动物病毒与相应的动物单层细胞反应产生的结果(裂解细胞
9、)枯斑:植物病毒感染植物叶面以后所产生的局部病理病死反应 细胞培养特点病毒的数量与感染性测定 1.1.蚀斑测定蚀斑测定n 是一种检查和准确滴定病毒感染性的方法。将稀释的病毒悬液加入单层细胞培养瓶中。病毒吸附后,再覆盖一层融化的半固体营养琼脂,使病毒在单层细胞培养中有限扩散。结果是每一个有感染性的病毒在单层细胞中可产生一个局限性的感染灶。用活性染料(如中性红)染色,则活细胞着色,受病毒感染而破坏的细胞不着色,形成肉眼可见的蚀斑(plaque)。每个蚀斑是由一个感染性病毒颗粒形成的,称作蚀斑形成单位(plaque forming unit,PFU)。病毒悬液中的感染性病毒量的滴度可用PFUml表示
10、。2.50%2.50%组织细胞感染量组织细胞感染量 (TCID50)(TCID50)测定法测定法 n 该方法是测定病毒能使50%的组织培养细胞发生感染的最小量。一般是将病毒悬液作10倍的系列稀释,分别接种细胞,经一定时间后观察CPE、血细胞吸附等指标,以最高稀释度能感染50%细胞的量为终点。最后用统计方法计算出50%组织细胞感染量(50%tissue culture infectious dose,TCID50)。细胞病变效应(cytopathic effect,CPE):由病毒增殖引起的细胞改变,称细胞病变效应。不同种类病毒可引起。细胞圆缩、分散、溶解,如肠道病毒、鼻病毒、披膜病毒、痘病毒等
11、;细胞融合成多核巨细胞,如疱疹病毒、副粘病毒、呼吸道合胞病毒;细胞肿胀、颗粒增多、病变细胞聚集成葡萄状,如腺病毒;胞质出现空泡,如SV40细胞;细胞浆或核内出现嗜酸性或嗜碱性包涵体,一至数个不等,如狂犬病毒和巨细胞病毒;轻微病变,如正粘病毒、狂犬病毒、冠状病毒和逆转录病毒等;培养液pH的变化。CPE小结小结 血清学方法一、病毒学研究常用方法中和试验:适用于病毒鉴定,机体中抗体的检测,分析病毒抗原的性质,疫苗接种效果评估等 补体结合试验血凝抑制试验:常用于正粘病毒和副粘病毒感染的诊断和病毒亚型鉴定及抗原变异的监测,如流感病毒的分型 酶联免疫吸附试验(enzyme linked immunosor
12、bent assay,ELISA)放射免疫试验(radio immunol assay,RIA)免疫荧光检测(immunofluorescence assay,IFA)凝胶扩散法(gel-diffusion test)病毒感染的血清学诊断n 原理是用已知病毒抗原来检测病人血清中有无相应抗体,故须待病人感染后体内产生抗体时才能检出。n 另外,在采取临床标本及病人血清应注意病程,必须采取患者急性期血清与恢复期血清(双份血清)进行血清学试验。若第2次血清抗体滴度比第1次高出4倍以上时,才有诊断意义。1.中和试验(neutralizing test,NT test)是病毒在活体内或细胞培养中被特异性抗
13、体中和而失去感染性的一种试验。中和抗体(netralizing antibodies,NTAb)是作用于病毒表面抗原(衣壳或包膜)的抗体,同种不同型病毒间一般无交叉,特异性高,而且抗体在体内维持时间长。中和抗体阳性不一定表示正在感染中,也可能因以前有过隐性感染所致。因此,中和试验适用于人群免疫情况的调查,在临床诊断上较少使用。2.补体结合试验(complement fixation test,CF test)n 用已知病毒可溶性(CF)抗原来检测病人血清中相应(CF)抗体。CF抗原是病毒的内部抗原,同种异型间常有交叉,故特异性较中和试验低。但CF抗体出现较早,消失较快,故CF阳性可作为近期感染
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