(10.4)--基于高通量测序技术分析肠道...在酒精性肝损伤小鼠中的变化.pdf
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1、基于高通量测序技术分析肠道菌群在酒精性肝损伤小鼠中的变化摘要 目的 建立酒精性肝损伤小鼠模型,分析其肠道菌群变化,并探讨小鼠酒精性肝损伤可能机制。方法 周龄小鼠随机分为对照组(组)和酒精组(组)。组使用 液体饲料喂养 后再给予单次酒精灌胃建立慢性加急性酒精性肝损伤模型。组使用液体对照饲料喂养,并给予等热量糊精灌胃。灌胃后 收集血清、肝脏和肠道组织以及粪便样本。检测血清丙氨酸氨基转移酶()、天冬氨酸氨基转移酶()、三酰甘油()水平;肝脏肿瘤坏死因子()、白细胞介素()、水平;观察肝脏和肠道 染色病理改变;采用 高通量测序检测粪便 多样性、多样性及门、属水平物种构成变化。结果 与 组相比,酒精暴露
2、导致小鼠血清、上升(),肝脏、升高()。染色结果显示酒精暴露的小鼠肝脏出现脂肪空泡,有散在细胞坏死以及炎性浸润;肠道结构欠清晰、腺体萎缩,有炎症浸润。组小鼠肠道菌群结构改变,菌门水平上,厚壁菌门()丰度升高(),菌属水平上,副萨特菌()丰度减少(),且以梭菌属中的、为关键菌属。结论 酒精性肝损伤小鼠的肠道菌群构成发生变化,该变化可能与肝病发生相关。关键词 酒精;肠道菌群;肝损伤中图分类号 文献标志码 文章编号 ():世界范围内,每年因饮酒造成的死亡人数超过 万,造成全球超过 的疾病负担。长期饮酒造成肝脏损伤,可发展为酒精性肝病(,)。在所有的肝脏疾病中发病率及病死率最高。越来越多证据表明,肠道
3、菌群在肝脏疾病的发病过程中发挥重要作用。肝脏和肠道由门静脉相连,一旦肠道菌群发生紊乱,肠道稳态被破坏,过量肠道抗原进入肝脏,会导致肝脏免疫耐受失衡,造成肝脏病变和损伤。已有研究表明 小鼠体内 丰度下降,丰度上升;但另有实验表明酒精暴露造成小鼠肠道 丰度增加,相对丰度下降。尽管已有研究表明肠道菌群与 发病密切相关,但肠道菌群多样性以及构成的具体变化尚存争议,仍需更多实验补充验证。该研究以慢性酒精喂养加急性酒精灌胃(模型)建立酒精性肝损伤小鼠模型,通过检测血清生化指标、肝脏炎性因子 水平、肝脏和肠道病理形态学改变及肠道菌群测序分析确定酒精暴露对肠道菌群的影响,揭示肠道菌群在酒精性肝病发生中的作用,
4、为酒精性肝损伤机制研究提供依据,以期为酒精性肝损伤患者的治疗提供新思路。材料与方法 材料 实验动物 只 周龄 雄性小鼠,体质量 ,购自北京维通利华实验动物技术有限公司。级动物房温度 ,湿度维持(),光照周期为 昼夜交替。该实验方案经安徽医科大学实验动物伦理审查委员会审核通过。动物饲料动物饲料均购自江苏南通特洛菲饲料科技有限公司。组小鼠喂养 酒精液体对照饲料()。能量构成比为:碳水化合物、脂肪、蛋白质。组小鼠喂养 酒精液体饲料(),饲料能量构成比为:碳水化合物、脂肪、蛋白质 和酒精。主要仪器 罗氏公司 全自动生化分析仪、石蜡切片机、全自动组织脱水机、组织包埋机、冷冻切片机均购自德国徕卡公司;显微
5、镜购自日本奥林巴斯公司。方法 动物分组与处理 只 周龄小鼠适应性喂养 周后,随机分配到对照组(组)和酒精组(组),每组 只;造模过程包括 液体饲料适应期,酒精液体饲料过渡期(酒精液体饲料与对照液体饲料混合的比例分别为(、),酒精饲料造模期和单次 酒精灌胃(组灌胃 麦芽糖糊精溶液)。灌胃 后麻醉小鼠取材,收集血清和组织进行后续检测。血清丙氨酸氨基转移酶(,)、天冬氨酸氨基转移酶(,)、三酰甘油(,)检测 取血后于常温静置 ,离心 ,分离血清后,使用全自动生化分析仪测定血清、以及 含量。染色 取新鲜组织,迅速置于 多聚甲醛内固定,制作石蜡包埋。制备 切片,进行苏木精和伊红染色,封片,光学显微镜下观
6、察()。肠道病理评分参考 评分标准。实时荧光定量 实验()根据 试剂盒说明书,提取肝脏组织总,稀释后确定 纯度并定量至 ,逆转录成 后,用 上机扩增,以 为内参,以 组与 组的比值来表示肿瘤坏死因子(,)、白细胞介素(,)、水平(表)。表 各基因的引物序列基因名称引物序列():测序造模结束时,采取无菌方法收集粪便,从每组随机选取 个粪便样品进行检测。利用 试剂盒提取粪便总基因组,取 合格的 样品加引物,引物序列为:,:,配置成 反应体系后对 区域进行扩增,扩增条件为、,循环 次(、,、,、),、,静置,纯化后的扩增产物溶 于 ,贴 上 标 志 完 成 建 库,以 测序系统的 模式上机测序,将原
7、始数据存储于序列数据库,用于后续分析。肠道菌群测序结果分析 多样性分析采用估计物种总数的 指数和综合评估群落丰富度及均匀度的 指数;多样性分析采用主坐标分析(,),使用相似性分析分别从门和属水平比较各组小鼠肠道菌群组成差异。采用组间群落差异分析(,)确定各组小鼠菌群样本之间有显著差异的类群。统计学处理结果以?表示,采用 统计软件进行分析,组间差异采用两独立样本 检验,以 为组间差异有统计学意义。结果 基本情况两组小鼠均无死亡现象,组小鼠最后 次灌胃后出现嗜睡、瘫倒等醉酒症状,后逐渐恢复意识。组小鼠情况良好、行动正常。酒精对小鼠体质量的影响酒精对小鼠体质量的影响见图。组小鼠实验期间体质量呈下降趋
8、势,且造模后期有较大幅度下降,由于 组遵循等热量喂养原则,组小鼠体质量与 组保持一致趋势,后期波动较为平稳。造模结束时,组相较于 组体质量降低(,)。表明摄入酒精对小鼠体质量有一定影响。图 酒精对小鼠体质量的影响与 组比较:酒精对小鼠肝脏损伤的影响 相较于 组,安徽医科大学学报 ;()组肝脏指数无升高趋势(,)(图)。与 组、相比,组血清、活性升高(,;,)(图、)。组 相较于 组有升高趋势,但差异无统计学意义(,)(图)。染色后显示 组小鼠肝小叶界限不清,肝索排列紊乱,可见清晰的脂肪空泡,同时观察到散在的细胞坏死以及炎性浸润(图)。组小鼠肝小叶结构正常,肝索放射状排列,肝窦及肝细胞未见明显病
9、理性损伤。酒精对小鼠肝脏炎性因子基因表达的影响与 组相比,组小鼠肝脏 有升高趋势,但差异无统计学意义(,),、相对表达量均升高(,;,;,)(图)。酒精对小鼠肠道病理改变的影响 组小鼠结肠黏膜表面不光滑、结构欠清晰,腺体排列紊乱、萎缩,可见炎症浸润。组小鼠结肠组织表面光滑,且腺体排列整齐,无明显充血或水肿现象。组与 组结肠病理学评分差异有统计学意义(,)。见图。图 酒精对小鼠肝脏损伤的影响:肝脏指数;:血清 水平;:血清 水平;:血清 水平;:肝脏 染色;与 组比较:图 酒精对小鼠肝脏炎性因子表达的影响:肝脏 水平;:肝脏 水平;:肝脏 水平;:肝脏 水平;与 组比较:安徽医科大学学报 ;()
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