大黄鱼血清IgM鼠源多克隆抗体的制备及其结合特性分析.docx

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1、摘 要 IgM是大黄鱼最主要的免疫球蛋白，在鱼体免疫系统中发挥重要作用。本论文以实验室前期利用Protein A亲和纯化的大黄鱼血清IgM为抗原，按照标准免疫流程免疫Balb/C小鼠，获取抗血清，即多克隆抗体。利用酶联免疫吸附方法（ELISA）测定鼠源抗血清的效价达到1:20000，效果较好；利用免疫印迹（Western blotting）对大黄鱼血清IgM鼠源多抗的结合特性进行了分析，结果显示多抗能特异性结合IgM重链和轻链，表明实验制备的多抗特异性良好，可应用于后续实验研究。大黄鱼血清IgM鼠多抗的制备有助于加深对鱼体免疫系统的理解，也将为大黄鱼免疫机理及相关免疫检测研究奠定基础。关键词：

2、大黄鱼；IgM；鼠多抗；ELISA；Western blottingAbstractIgM is the main immunoglobulin in large yellow croaker, which plays a vital role in the immune system of fish. In this thesis, the serum IgM of Larimichthys crocea purified by protein A affinity, according to the standard immune process, was used as antigen

3、to immunize Balb/c mice, and the antiserum, polyclonal antibody, was acquired. The valence of mouse antiserum determined by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) achieved 1:20000. Western blotting was used to analyze the binding characteristics of murine polyclonal antibodies against serum IgM o

4、f L. crocea. The results showed that the polyclonal antibodies could specifically combine with heavy and light chains of IgM L. crocea, which indicated that it prepared in this experiment had good specificity and could be applied to subsequent experimental studies. The preparation of rat polyclonal

5、antibody against the serum IgM of L. crocea helps to understanding of the immune system of the fish, and will also lay a foundation for the study of the immune mechanism and related immune detection of L. crocea.Key words： Larimichthys crocea; IgM; mice polyclonalantibody; ELISA; Western blotting目 录

6、1引 言11.1大黄鱼的基本概况11.2 鱼类免疫球蛋白研究进展11.3 多克隆抗体的制备及其应用21.3.1 多克隆抗体的制备21.3.2 多克隆抗体的结合特性分析21.3.3 多克隆抗体的应用31.4 本课题研究意义42 实验材料与方法42.1 实验材料42.1.1 实验动物42.1.2 实验仪器与设备42.1.3 实验试剂52.1.4 实验缓冲液62.2 试验方法62.2.1大黄鱼IgM鼠源抗血清的制备62.2.2 大黄鱼IgM鼠源抗血清效价的测定62.2.3 大黄鱼IgM鼠源抗血清结合特性分析73 实验结果93.1 ELISA测定鼠源大黄鱼IgM抗血清的效价93.2 Western-b

7、lotting分析鼠源大黄鱼IgM抗血清的结合特性104 结论与展望114.1结论114.2展望11参 考 文 献12致 谢14大黄鱼血清IgM鼠源多克隆抗体的制备及其结合特性分析1引 言1.1 大黄鱼的基本概况大黄鱼（Larimichthys crocea）隶属脊索动物门（Chordata）、脊索动物亚门（Vertebrata）、硬骨鱼纲（Osteichthys）、鲈形亚目（Percoidei）、石首鱼科（Sciaenidae）、黄鱼属（Larimichthys），我国东南沿海是其主要的栖息地，属于我国海洋主要经济鱼类之一，被誉为中国“海洋四大经济鱼类”1。福建省宁德市是我国大黄鱼产业的发源

8、地，也是规模最大的养殖基地，根据全国渔业年鉴统计数据表明，2017年我国大黄鱼养殖产量17.76万吨，其中福建15.05万吨，占全国总产量84.7%2。从20世纪80年代大黄鱼人工繁育实现技术突破后，大黄鱼网箱养殖得到迅速的发展，如今，大黄鱼已经成为我国养殖规模最大的海水养殖鱼类3。但随着养殖规模的不断扩增，导致养殖区生态环境日益恶劣，再加上经长期的人工繁育导致大黄鱼的许多优良性状逐步的退化，机体免疫力下降等原因，致使其各种各样的病害频发4。在诸多病害中，以细菌病和寄生虫病居多，细菌病因其发病率高，流行范围广，防治困难，危害最为严重，成为限制大黄鱼养殖健康发展的重要因素5。1.2 鱼类免疫球蛋

9、白研究进展免疫球蛋白（immunoglobulin, Ig）是抗原物质刺激机体的免疫B细胞，使其转变为成熟浆细胞，浆细胞经过一系列的反应产生能和相应抗原特异性结合的免疫球蛋白。鱼类的免疫球蛋白研究表明，目前在硬骨鱼类中已经分离得到的免疫球蛋白包括IgM、IgD、IgZ和IgT6。硬骨鱼血液和黏液中最主要的一类免疫球蛋白是IgM，它是最早被发现的 7，而随后发现的其他两类免疫球蛋白含量较低8-10。IgM发现最早、研究最多，其为四聚体分子，重链具有较高的保守性11，重链的分子量大小在70kD左右，轻链的分子量大小在30kD左右。它起着重要的作用，在机体防御早期，结合在B细胞表面作为B细胞受体或者

10、分泌到体液中行使抗体功能12。另外，在没有受到明显的外源抗原刺激时，在鱼体内也有天然抗体的存在，这些天然抗体在固有免疫和获得性免疫应答中起重要作用13。鱼类血清IgM可用于制备单克隆抗体、多克隆抗体等，用于鱼类免疫应答研究。1.3 多克隆抗体的制备及其应用多克隆抗体（polyclonal antibody, pAb）是指机体受一类含有多种抗原决定簇的抗原刺激，使机体的免疫细胞产生能与这些抗原特异性结合的抗体，所得到的抗血清是多种抗体的混合物。多克隆抗体具有制备的时间周期短，成本低，与抗原特异性结合能力强等优点，因此在各方面的应用也是十分的广泛。1.3.1 多克隆抗体的制备多克隆抗体制备的原理是

11、根据外源抗原在机体内进行免疫应答，产生对应抗原的抗体。其制备的过程是按照免疫的标准流程，将体外的抗原和佐剂混合成乳状液后注射进入健康的动物体内，经过多次的注射后，使得免疫动物的体内产生能与此抗原特异性结合的抗体，取免疫动物的血液经过离心得到的血清就是抗该特定抗原的抗血清。多克隆抗体的制备就是利用动物机体的免疫系统，当外界抗原进入体内，刺激相应的免疫细胞生产抗特定抗原的抗体，得到的抗体可特异性识别相应的抗原。1.3.2 多克隆抗体的结合特性分析采用免疫印迹等实验验证抗体结合特性的前提是制备的多克隆抗体具有效价良好，因此多抗效价的测定必不可少。（1）多克隆抗体的效价测定目前，被广泛应用于多抗效价测

12、定的方法是酶联免疫吸附实验（Enzyme Linked Immunosorbent Assay, ELISA）。ELISA方法基于抗原、抗体特异性结合和酶的高效催化作用相结合的基础上，将抗原或抗体固定在以聚苯乙烯为材料酶标板上，每加入一种抗原或抗体孵育后，为了使试验结果具有较高的准确性，减少一定的误差，都应将剩余的游离反应物洗涤除去，最后与酶标记的抗体反应，加入酶的底物催化生成有色物质，进行定性定量的检测。自ELISA方法出现以来之所以得到了广泛应用，是因为其实验方法具有敏感、快速、操作简便等的优点。在实际应用中，往往根据检测物质的差异，选取相应的检测方法，用间接法、双抗体夹心法和竞争法分别检

13、测抗体、抗原以及小分子抗原或半抗原。 （2）多克隆抗体的结合特性分析制备的多克隆抗体的结合特性的分析方法是多种多样的，免疫印迹法(Western blotting)之所以是检测蛋白结合的常用方法之一，是因为其具有较大的分析容量、较高的检测敏感度、较强的结合特异性等的优点。免疫印迹法是一种将凝胶电泳和免疫化学分析技术相结合的技术。该技术在生物化学上也被广泛应用于病毒的抗体或抗原检测、多肽分子的质量测定及组织抗原的定性定量检测等。李再禹14等人认为随着生物技术的飞速发展，应用免疫印迹等技术分析致病菌的毒力蛋白，是生物技术领域制备疫苗的一个理想途径；根据抗体通过抗原决定簇识别抗原的机理，Rachko

14、v和Minoura15发展了另一种免疫印迹法，以蛋白质表面暴露的一小段短肽为模板进行印迹的抗原决定基印迹，得到的印迹材料对模板肽段和蛋白同时具有识别作用；朱丽英和肖卿玉16 等人利用免疫印迹技术成功鉴定了3个可能的乳腺癌相关抗原；胡翠华和张传宝17 等人利用免疫印迹技术对癌胚抗原进行了鉴定；郑磊18等人利用免疫印迹和间接ELISA证明兔抗美洲黑石斑鱼血清IgM多克隆抗体能与美洲黑石斑鱼血清IgM特异性结合。1.3.3 多克隆抗体的应用目前，多克隆抗体的应用主要在抗体活性和抗体水平的变化方面的检测，也用于检测特异性抗体在机体内的分布以及抗体表达变化量等的方面。而制备抗血清免疫球蛋白的多克隆抗体主

15、要应用于检测血清免疫球蛋白活性，也帮助理解血清免疫球蛋白的结构类型及生理生化功能，为阐述其在机体内如何进行免疫提供基础，也作为一种对重大疾病进行早期判断和疫苗效果进行评价的工具。同时，为了研究鱼类血清中抗体在不同时期的变化水平，并对鱼类疾病进行早期判断诊疗和研制疫苗效果的进行评价工具，越来越多的鱼类血清免疫球蛋白多克隆抗体被制备。陈垚19等人通过制备兔抗鲫鱼血清IgM的多克隆抗体，制备出兔抗鲫鱼血清IgM多克隆抗体亲和柱，为分离纯化皮肤粘液的IgM做准备，并为之后进一步研究鲫鱼免疫系统等奠定基处。丁炜东20等人通过制备兔抗草鱼血清IgM多克隆抗体；刘振兴21等人通过制备兔抗黄鳍棘鲷血清IgM多

16、克隆抗体；郑磊18等人通过制备兔抗美洲黑石斑鱼血清IgM多克隆抗体，并为进一步研究草鱼、黄鳍棘鲷和美洲黑石斑鱼的免疫系统和免疫机理及相关免疫检测研究奠定基础。鄢庆枇22等人通过制备兔抗大黄鱼血清IgM多克隆抗体的制备，为进一步理解大黄鱼免疫系统，为研究大黄鱼的免疫机理及相关免疫检测奠定基础。1.4 本课题研究意义本论文在实验室前期分离纯化的大黄鱼血清IgM的基础上，选取Balb/c品系小鼠，按照标准免疫流程，制备了鼠源大黄鱼血清IgM多克隆抗体，运用酶联免疫吸附实验（ELISA）测定鼠抗大黄鱼血清IgM的效价，免疫印迹（Western Blotting）方法对制备的鼠多抗的结合特性进行了分析。

17、研究内容有助于加深对大黄鱼免疫系统的理解，也将为研究大黄鱼的免疫机理以及相关免疫检测奠定基础。2 实验材料与方法2.1 实验材料2.1.1 实验动物6-8周（16-30g）Balb/C雌鼠购于吴氏实验动物公司。2.1.2 实验仪器与设备表2-1 实验仪器与设备仪器型号厂家多功能超纯水系统Unique-S20厦门锐思捷电泳仪电源DYY-6C型北京六一高速离心机3K15Sigma分析天平BSA-124SSartorius电子天平YP802N上海精科高压灭菌锅GR60DAZEALWAY制冰机AF100-ASSartorius精密可程式烘箱BXH-65上海博讯表 2-1 实验仪器与设备 （续）仪器型号

18、厂家电冰箱BCD-225WDGK青岛海尔医用冷藏箱HYC-310青岛海尔抽滤系统Chemical DutyMillipore水平摇床Ts-8型其林贝尔pH计Pb-10Sartorius蛋白质纯化系统GE AKTA PureAmersham电泳装置Mini-Protein cellBio-Rad冷冻干燥机YB-FD-18上海亿倍磁力搅拌器IKA RH basicIKA移液排枪Eppendorf Research plusThermo酶标仪Varioskan LUXThermo涡旋振荡器Vortex 2IKA2.1.3 实验试剂表2-2 实验试剂试剂名厂家弗式完全佐剂Sigma弗式不完全佐剂Sig

19、ma2Protein SDS-PAGE Loading BufferTaKaRaTrisSolarbioGlycineSolarbioSDSSolarbio碱性磷酸酶（AP）标记的羊抗鼠Ig抗体SigmapNPP上海生工BSASolarbioBCIP/NBT碱性磷酸酯酶显色试剂盒beyotime2.1.4 实验缓冲液论文使用的缓冲溶液包括磷酸盐缓冲液（PBS）、磷酸盐吐温缓冲液（PBST）、5%牛血清白蛋白溶液（BSA）、pNPP发色液（现配现用）、pNPP缓冲液、1.5M Tris-HCl（pH8.8）、0.5M Tris-HCl（pH6.8）、蛋白电泳缓冲液、考马斯亮蓝G250染液、电转移

20、缓冲液及丽春红染色液等。2.2 试验方法2.2.1大黄鱼IgM鼠源抗血清的制备大黄鱼血清IgM经饱和硫酸铵粗提、Protein A柱亲和纯化及透析冻干后，以少量PBS重悬，经Bradford蛋白浓度测定试剂盒测定浓度约2mg/mL。PBS将纯化蛋白调整至浓度约1 mg/mL后，分4次分别免疫Balb/c小鼠。（1）基础免疫：将纯化后大黄鱼血清IgM与弗氏完全佐剂1：1 混合，用注射器混匀使其形成“油包水”乳化剂，以液体滴入清水中10s不散时为准，充分乳化后用无菌注射器腹腔注射小鼠，0.2 mL/只。（2）加强免疫：两周后进行第1次加强免疫，纯化后大黄鱼血清IgM和弗氏不完全佐剂1：1 混合，用

21、注射器混匀使其形成“油包水”乳化剂，以液体滴入清水中10s不散时为准，采用腹腔注射小鼠，0.2 mL/只。第四周和第五周各再加强免疫1 次，尾静脉注射纯化后大黄鱼血清IgM蛋白0.2 mL/只，无佐剂。（3）抗血清的制备：最后一次加强免疫的一周后，运用摘眼球的方法一次性取血，在室温中倾斜放置2 h，后放置在4 冰箱过夜；次日8000 rpm离心10min获得鼠抗血清。（每只小鼠取全血约1mL，离心后获抗血清约0.4mL）2.2.2 大黄鱼IgM鼠源抗血清效价的测定参考孙敏23论文多抗效价测定方法，采用间接ELISA的方法，按照抗原包被、BSA封闭、一抗孵育、酶标二抗孵育及发色等步骤测定多抗效价

22、。（1）包被抗原：取520g/mL的大黄鱼血清IgM蛋白溶液作为抗原加入酶标板中，每孔100L，4包被过夜。（2）封闭：包被完成后，弃去包被液，小心甩干残留液体，用排枪加入每孔280L PBST洗三次，每次5min。甩干孔内液体，每孔加入200L BSA，37封闭1-2h。（3）一抗孵育：封闭完成后，弃去封闭液，用PBST洗三次，每次5min，甩干残留的液体。将小鼠抗大黄鱼IgM的血清梯度稀释500倍、1000倍、2000倍、4000倍、5000倍、8000倍、10000倍、20000倍、30000倍、40000倍、50000倍、100000倍，依次加入酶标板中，每孔100L，对照孔用等量健康

23、小鼠血清代替，37孵育1h。（4）二抗孵育：一抗孵育完成后，弃去孵育液，用PBST洗三次，每次5min，甩干残留的液体，向每个孔中加入AP标记的羊抗鼠Ig的二抗100L，37孵育1h。（5）发色：二抗孵育后，弃去孵育液，PBST洗三次，每次5min，甩干残留的液体，用排枪向每个孔中加入pNpp发色液100L，现配现用，置于酶标仪中，405nm处连续读数，选取对照组度数为0.070.08时的度数为最终读数，计算P/N值，以P/N2.1时判定结果为阳性，结果为阳性时的最大稀释倍数即为血清效价。2.2.3 大黄鱼IgM鼠源抗血清结合特性分析大黄鱼IgM鼠源抗血清结合特性分析采用免疫印迹法 （West

24、ern blotting）的方法。该方法首先将亲和纯化的大黄鱼血清IgM经变性聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）分离后，转移至PVDF膜；随后用制备的鼠抗大黄鱼血清IgM的多抗作为一抗，AP标记的羊抗鼠Ig作为二抗进行免疫反应，最终NBT-BCIP发色液进行发色。具体步骤如下：（1） SDS-PAGE分离亲和纯化的大黄鱼血清IgM制胶：按表2-3比例配制分离胶和浓缩胶，首先配好的分离胶倒入组装好的玻璃夹层中，液面到达玻璃夹层的2/3以上，为了保持凝胶的平整，上部用蒸馏水进行水封。待分离胶凝聚后，倾出分离胶上面的蒸馏水，用剪切好的小滤纸将多余的水分吸出，注意不要碰到分离胶。其次向玻璃夹层内加

25、入浓缩胶直至溢出。最后插入点样梳，待浓缩胶凝聚后，轻轻地拔去点样梳。表2-3 SDS-PAGE凝胶电泳体系组分12%分离胶（10）mL5%浓缩胶（5mL）蒸馏水3.3mL2.8mL30% Acr-Bis（29：1）Tris-Hcl10%SDS10%Aps4.0mL2.5mL（1.5M pH8.8）100L100L0.8mL1.25mL（0.5M pH6.8）60L60LTEMED5-10L5-10L样品处理：将纯化后的大黄鱼血清IgM与等量的2loading buffer混合后，置于沸水中煮样5-10分钟。电泳：将夹胶玻璃板固定后入电泳槽内，用移液枪吸取15-20L的样品，如果样品数不够加满泳

26、道，前后要用等量的buffer压一下泳道。加电泳缓冲液入上下贮槽内，接通电源保持30mA恒流，直至溴酚蓝指示剂从底部边缘跑出，应立即停止电泳。后轻撬开两层玻璃，取出凝胶，将上部的浓缩胶去除，在分离胶切掉一角标志加样顺序。（2） 将分离后的蛋白转移至PVDF膜，后进行免疫反应剪取一张PVDF膜与电泳凝胶大小一样，并剪掉一个角，以标志样品顺序，将电泳凝胶和PVDF膜浸泡在电转移缓冲液中15min以上。并剪取两张比蛋白电泳凝胶略大的滤纸用缓冲溶液浸湿。将其组合成“三明治”样夹子：浸湿的泡沫垫-滤纸-PVDF膜-SDS-PAGE凝胶-滤纸-浸湿的泡沫垫（顺序小心铺好，整个过程在转移缓冲液中进行，层与层

27、之间不允许有气泡）。在“三明治”夹子的最外部用两块支持板支撑，后将整个夹子置于盛有电转移缓冲液的电泳槽内，将PVDF膜面对着电源阳极。30V恒压，转移2h。转移完毕，取出PVDF膜用丽春红染色，观察条带，并将两条蛋白样品用剪刀剪开（不要用手直接接触PVDF膜），用蒸馏水浸泡脱去颜色。用PBST洗涤10min，然后在5%的牛血清白（BSA）溶液中37封闭45min，封闭完成后用PBST洗三次，每次5min。其中一条PVDF膜放入稀释的鼠抗大黄鱼血清IgM血清中（鼠源抗血清经ELISA测定其效价），另一条用健康小鼠的血清作为对照，在37反应1h，用PBST洗三次，每次5min。将PVDF膜放入AP

28、标记的羊抗鼠Ig的二抗中，37 C孵育1 h，用PBST洗三次，每次5min。后把PVDF膜放入NBT-BCIP发色液中在暗处发色，并观察发色情况。发色后用去蒸馏水洗涤终止反应。将PVDF膜夹在滤纸间，干燥，置暗处保存。3 实验结果3.1 ELISA测定鼠源大黄鱼IgM抗血清的效价用分离纯化后的大黄鱼血清IgM蛋白免疫Balb/C小鼠，制备鼠抗大黄鱼血清IgM血清，运用间接 ELISA 的方法对鼠抗大黄鱼血清IgM血清进行效价测定。用纯化的大黄鱼血清IgM蛋白为抗原，梯度稀释的鼠抗大黄鱼IgM蛋白的血清为一抗，碱性磷酸酶（AP）标记的羊抗鼠Ig抗体为二抗。结果显示，在405nm可见光下，血清稀

29、释倍数为500倍、1000倍、2000倍、4000倍、5000倍、8000倍、10000倍、20000倍、30000倍、40000倍、50000倍、100000倍时，抗血清的P/N值分别为5.83、6.07、5.66、5.37、5.38、4.26、3.22、2.20、1.78、1.73、1.72、1.48（表3-1）。当P/N值2.1时，结果可被判定为阳性，所以本试验制备的鼠抗大黄鱼IgM多克隆抗体的效价为20000（图3-1）。表3-1 鼠抗大黄鱼血清IgM血清P/N值稀释倍数OD值P/N值123平均值对照组0.0810.0830.0850.083 5000.4950.4820.4740.4

30、84 5.8310000.50.520.4910.504 6.0720000.4880.4620.4770.470 5.6640000.460.4310.4460.446 5.3750000.4450.4870.4070.446 5.3880000.3620.3430.3550.353 4.26100000.2680.2580.2760.267 3.22200000.1860.1830.1790.183 2.20表3-1 鼠抗大黄鱼血清IgM血清P/N值（续）300000.1510.1420.150.148 1.78400000.1420.1440.1450.144 1.73500000.13

31、90.1410.1490.143 1.72100000 0.1210.1230.1240.123 1.48图3-1 鼠抗大黄鱼血清IgM多克隆抗体的效价3.2 Western-blotting分析鼠源大黄鱼IgM抗血清的结合特性以制备的鼠源抗大黄鱼血清IgM多抗为一抗，碱性磷酸酶（AP）标记的羊抗鼠Ig为二抗，通过Western-blotting实验分析，结果显示以健康小鼠代替鼠源抗血清的阴性对照组无显色条带（图3-2，泳道2），实验组（图3-2，泳道3）在约70kD和28kD左右出现与大黄鱼血清 IgM（图3-2，泳道1）的重链和轻链的位置一致的条带，由此可以确定该鼠抗血清可以特异性结合大黄

32、鱼血清IgM。1：Marker；2：健康小鼠血清；3：鼠多抗图3-2 纯化大黄鱼血清IgM Western-blotting分析4 结论与展望4.1结论本论文在实验室前期分离纯化的大黄鱼血清IgM的基础上，选取Balb/c品系小鼠，按照标准免疫流程，制备了鼠源大黄鱼血清IgM多克隆抗体，运用酶联免疫吸附实验（ELISA）测定其多抗效价，并采用免疫印迹（Western Blotting）方法检测所制备的多克隆抗体的结合特性，结果显示，该实验制备的抗血清效价达到1:20000，说明其效果良好。免疫印迹（Western Blotting）检测到对应的反应条带与大黄鱼血清IgM的重链和轻链相对应，分别

33、约为70kD和28kD。本研究成功制备了鼠抗大黄鱼IgM血清具有效价较高、特异性较强的特点，为后续研究鱼体应答病原感染提供实验材料。4.2 展望本试验制备了大黄鱼血清IgM的鼠源多克隆抗体，经过ELISA检测和免疫印迹的技术检测，说明该多克隆抗体的效价良好，特异性结合能力强。在此基础上，后续实验将以制备的鼠抗大黄鱼血清IgM为工具，筛选大黄鱼主要病原菌的免疫原性蛋白，并制备其亚单位疫苗和DNA疫苗，防治病原侵染。参 考 文 献1张彩兰,刘家富,李雅璀,等.福建省大黄鱼养殖现状分析与对策J.上海水产大学学报,2002(01):77-83.2王凡,廖碧钗,孙敏秋,等.福建大黄鱼产业发展形势分析J.

34、中国水产,2019(03):45-49.3这条深受欢迎的海水鱼,现在野生海捕量已不足万吨,谁能养殖出“野生”大黄鱼谁就是赢家J.当代水产,2018(1):92-93.4李长红,杨智景,李明云,等.大黄鱼养殖现状分析与对策J.上海海洋大学学报,2002,11(1):77-83.5安树伟.大黄鱼内脏白点病的病原及组织病理研究D.宁波大学,2013.6Hansen J D, Landis E D, Phillips R B. Discovery of a unique Ig heavy-chain isotype (IgT) in rainbow trout: Implications for a

35、distinctive B cell developmental pathway in teleost fish J. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2005, 102.7Lobb C J，Clem L W, The metabolic relationships of the immuno-globulins in fish serum, cutaneous mucus, and bileJ.Journal of Immunology, 1981, 127, 1

36、525-1529.8Bengtn E, Quiniou S M, Stuge T B, et al. The IgH locus of the channel catfish, Ictalurus punctatus, contains multiple constant region gene sequences: different genes encode heavy chains of membrane and secreted IgDJ. The Journal of Immunology,2002,169, 2488-2497.9Eva-Stina E, Bengtn E, Sta

37、fford JL, et al. Identification of Two IgD+ B Cell Populations in Channel Catfish, Ictalurus punctatusJ. The Journal of Immunology,2010, 185, 4082-4094.10ZhangY A, Salinas I, Li J, et al. IgT, a primitive immunoglobulin class specialized in mucosal immunityJ. Nature Immunology,2010,11, 827-835.11Wil

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39、 Zhevelev H M, et al. Natural antibodies and their significance in active immunization and protection against a defined pathogen in fishJ. Vaccine,2002, 20, 3668-3674.14李再禹,郑冬.蛋白免疫印迹技术在常见畜禽疫病病原检测中的研究进展J.上海畜牧兽医通讯,2011(01):15-16.15Rachkov A, Minoura N. Towards molecularly imprinted polymers selective

40、to peptides and proteins. The epitope approach Bioch Biophys Acta, 2001, 1544: 255266.16朱丽英,肖卿玉,杨柳,等.应用双向电泳、免疫印迹和质谱技术筛选乳腺癌相关抗原J.贵阳医学院学报,2015,40(09):922-925+934.17胡翠华,张传宝.生物素-亲和素-免疫印迹技术在癌胚抗原鉴定中的应用J.江西医学检验,2005(04):289-290+381.18郑磊,马振宁,吴斌,等.美洲黑石斑鱼血清IgM纯化及其兔抗血清部分特性J.上海海洋大学学报,2011,20(04):494-498.19陈垚,王石

41、泉,韩晓冬,等.鲫鱼血清和皮肤粘液IgM的分离纯化及部分性质的鉴定J.动物学研究,2003(02):111-115.20丁炜东,曹丽萍,曹哲明.草鱼血清IgM蛋白的纯化及抗血清的制备J.水生生物学报,2010,34(01):164-169. 21刘振兴,张殿昌,苏天凤,等.黄鳍棘鲷血清IgM的纯化及兔抗血清的制备J.中国水产科学,2008(01):129-135.22鄢庆枇,韩一凡,高天翔,等.大黄鱼血清IgM纯化及其兔抗血清的制备J.中国水产科学,2006(03):475-479.23孙敏.牙鲆CD3多克隆抗体制备及其在T细胞鉴定中的应用D.中国海洋大学,2014.致 谢时间总是匆匆，不知不

42、觉大学四年的时间如白驹过隙忽然而已，随着毕业论文的结束，四年的大学生涯也即将结束。回首大学时光，有开心的，也有不开心的，但依然很珍贵，感恩这四年里相互陪伴的每个人和每件事。首先，我要感谢的的论文指导老师何亮银老师，从论文研究的选题、设计、实施、论文撰写等各个方面都给了全面细心地指导。亮银老师不仅在一些基础的理论上耐心解释，而且在一些实验操作上也是手把手的教我，在实验结果不理想的时候会帮助我分析在实验过程中可能的哪些因素导致的结果不理想，为下一次实验更好的规避风险，取得良好的实验数据。从我进实验室开始，我的思考问题的能力和实验操作的能力都有所提高。此外，亮银老师对待科研和工作严谨的态度，思考问题的全面性都是值得我学习的地方。其次，还要感谢实验室的师兄师姐们、同学们和师妹们。感谢你们一直以来的帮助，在实验遇到问题时帮助我分析原因，鼓励我不气馁，使我能够顺利的完成毕业论文。向大家表达最真挚的感谢，感谢大家的帮助和鼓励。最后，也要感谢我的家人和陪伴我一路走来的同学和朋友。感谢你们在此期间给予的包容、关爱和支持，正是由于你们的支持和鼓励，我才能更好的完成我的学业，顺利毕业。14