三种激素对‘紫甜无核’葡萄扦插生根的影响.doc

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1、目录摘 要IAbstractII缩略词表III引 言11.材料与方法21.1试验材料21.2试验地点和时间31.3插段的处理31.4扦插后管理41.5指标测定42.结果与分析52.1不同浓度NAA对紫甜无核葡萄扦插生根的影响52.2不同浓度IBA对紫甜无核葡萄扦插生根的影响62.3不同浓度ABT对紫甜无核葡萄扦插生根的影响82.4三种激素对紫甜无核葡萄扦插生根的影响93.讨论104.结论11参考文献11附 录1致 谢1三种激素对紫甜无核葡萄扦插生根的影响摘 要以一年生紫甜无核葡萄休眠硬枝为试验材料，采用不同浓度的萘乙酸（NAA）、吲哚丁酸（IBA）和生根粉（ABT）进行扦插处理，以清水处理作为

2、对照，探究不同激素、不同浓度对紫甜无核葡萄扦插生根的影响。扦插60天后进行各项指标的测量，统计平均根数、平均根长、总根表面积、总根体积、根平均直径、生根率，计算根系效果指数。结果表明：NAA、IBA和ABT对紫甜无核葡萄扦插生根的作用效果显著,其中NAA和IBA均以200mg/L处理的效果最佳，ABT以50mg/L处理的效果最佳，将三种激素的最佳浓度进行比较，其中以200mg/LNAA为最佳处理，生根率为100%，根系效果指数为1.803，与其它处理相比，具有显著性差异(P0.05)。关键词：紫甜无核葡萄;ABT;IBA;NAAIIIAbstractThe effects of differe

3、nt hormones and different concentrations on the rooting of annual purple sweet seedless grape were studied by using NAA, IBA and ABT as the experimental materials.The average root number, average root length, total root surface area, average root diameter, rooting rate and root effect index were cal

4、culated.The results showed that NAA, IBA and ABT on the role of purple sweet seedless grape cuttings rooting effect is remarkable, with 200 mg/L NAA and IBA were among them to handle the best results, ABT to 50 mg/L processing effect is best, compares the optimal concentration of three kinds of horm

5、ones, of which 200 mg/LNAA as the best treatment, the rooting rate was 100%, the root effect index was 1.803, compared with other processing, with significant difference (P 0.05).Key words: purple sweet seedless grape; ABT. IBA. NAA缩略词表缩略符号Abbreviations英文名称English Name中文名称Chinese NamemgMilligram毫克LL

6、iter升IBAIndolebutyric acid吲哚丁酸NAA1-naphthlcetic acid萘乙酸CKContrast对照Centidegree摄氏度cmCentimeter厘米mmCillimeter毫米mlMilliliter毫升gGram克引 言紫甜无核又名A17，其父本为皇家秋天，母本为牛奶，选自昌黎县李绍星葡萄育种研究所葡萄试验园1。该品种在河北昌黎九月初成熟，属于晚熟品种，果肉硬脆，果粒椭圆形，糖度高，适应性强，抗病能力强，耐贮藏，挂果时间长，属天然无核产品。利用种子繁殖品种极易发生退化，可通过扦插繁殖的方式将其优良性状稳定遗传。扦插繁殖(cutting propaga

7、tion)是指利用植物细胞的全能性，依靠母本植株切离下来的根、茎、叶等营养体，在一定的条件下重新发育成一棵完整植株的繁殖方法。此方法是由植物的体细胞直接分化、发育而来，体细胞经有丝分裂的方式，产生和母细胞具有相同遗传信息的细胞，最终生长发育成为新的个体。扦插繁殖不需要经过减数分裂与受精作用，是优良母本的世代的直接延续，故可以较稳定、一致地保存母本的遗传特性，且大大缩短育苗周期2。扦插繁殖是传统无性繁殖方法中应用最为普遍的一种3，扦插繁殖与嫁接、组培等其它无性繁殖方法相比，具有繁殖系数高、操作便捷、成本低等优点；与种子繁殖等有性繁殖方法相比，具有能够保持母本优良特性、提早开花、可有目的地繁殖雌株

8、或雄株等优点4-5。植物扦插后能够生根成活，是由于这些扦插的组织或器官等在脱离母本之前，就已形成了根原基。这些根原基在正常情况下，生长比较缓慢，一般处于休眠的状态。植物的组织或器官等一旦离开母体，将其放入温度适宜、水分充足的环境中，这些休眠的根原基便迅速萌动，逐渐生长成白嫩的幼根。与此同时在离体组织或器官的形态学下端伤口或切口位置的活细胞开始加速分裂，在内源激素和外界环境刺激下逐渐形成愈伤组织。多数植物在形态学下端伤口或切口13cm的范围内因受到伤口的刺激，逐渐分化产生不定根原基，继而发育形成植物新生根系。切口或伤患处能够长出新的植株根系，使植物能够正常存活，并旺盛生长6。生长素在枝条基部的积

9、累，活化了形成层，细胞分裂素促进了细胞分裂。在生长素和细胞分裂素等激素的共同作用下，根原基逐渐形成，从而长出了不定根7。在植物的整个生长发育过程中，除了需要大量的水分、无机盐和有机物质外，还需要一些微量的具有调节作用的物质来调节与控制植物体内的各种代谢过程，以适应复杂多变的外界环境条件。植物激素是指一些在植物体内合成的，从产生部位运输到作用部位，对植物的生长和发育具有显著调节作用的微量有机物质。从20世纪30年代植物激素的研究自生长素开始，进入20世纪40年代以后，在世界上形成了一个研究生长素的高潮，逐步确立了植物体内的五大激素：生长素度(Auxin)、赤霉素(Gibberelin)、细胞分裂

10、素、脱落酸(Abscisicacid)和乙烯(Ethylene)。前三类是具有显著促进生长发育的物质，脱落酸是一种同时具有促进和抑制生长发育的物质，而乙烯则主要是一种促进器官成熟的物质。它们都是些简单的小分子有机化合物，但它们的生理效应却非常复杂、多样。这几种激素在植物生长发育的不同时期除各有其独特作用外，还能互相促进或抑制，充分发挥调节植物生长发育的作用。一些矿质养分如氮、磷、钾和土壤逆境胁迫会影响植物根系激素的含量和分布，进而调控根系生长。自从研究确定植物的内生长和发育是由植物自身产生的激素控制以来，人们通过模拟天然植物激素的结构，渐渐合成了能改变植物内部激素系统的化合物，并称其为植物生长

11、调节剂。这些由人工合成的植物激素，在人为控制条件下通过植物外源的施加，使其对植物产生相应作用。内源生长素在插穗下切口的积累或外施生长素或类似生长素药剂（如IAA、NAA、2，4-D等）对许多易生根树种的插穗都有促进愈伤组织增殖的作用。尤其是促进插穗诱导生根原基的形成，使根原基形成的速度和数量都有明显提高8。外源激素处理是目前较为常用的提高植物扦插生根率的方法，本次试验中采用的萘乙酸(NAA)、吲哚丁酸(IBA)和生根粉（ABT）都是比较常见的促进植物扦插生根的外源激素。本试验采用这三种激素处理紫甜无核葡萄插穗，并分别设置不同的浓度处理，运用操作相对简单、高效的扦插繁殖的方式，确定最适宜的激素及

12、其浓度，从而指导其以后在紫甜无核葡萄生产中的应用，培育优质壮苗。1. 材料与方法1.1试验材料以一年生紫甜无核葡萄休眠硬枝为试验材料，于2018年冬季修剪时，在聊城市云朵庄园选取生长健壮，芽粒饱满，无病虫害的一年生紫甜无核葡萄枝条，将其剪成90cm左右短枝，50枝为一捆，沙藏冬储备用。2019年春天将沙藏冬储备用的葡萄枝条修剪成试验所需插段。从枝条形态学下段开始，每段枝条保留2-3个芽，上端距芽眼1.01.5cm处剪平，下端距芽眼1.01.5cm斜剪，插段长1525cm，每20根为1捆，斜面朝下，放入清水中浸泡，防止插段失水过多生活力下降。1.2试验地点和时间本次试验在聊城大学农学院试验田进行

13、，时间为2018年4-6月。试验期间平均温度20以上，土壤相对湿度80%90%，扦插基质为试验田土壤。试验前首先选取合适地块翻土整地，深度1525cm。将土块打散，除去杂草石块等。将土地整平，做成长20米，宽1.5米的苗床。扦插前用500倍多菌灵溶液喷洒土壤进行消毒处理，并铺设地膜保温保墒，为扦插做好准备。1.3插段的处理表1-3 不同种类和浓度的激素对紫甜无核插段的处理Table 1-3Treatment of purple sweet seedless intercalation with different kinds and concentrations of hormones处理Tr

14、eatments激素Hormone浓度(mg/ L) Concentration1CK102NAA503NAA1004NAA1505NAA2006NAA2507CK208IBA509NAA10010NAA15011IBA20012IBA25013CK3014ABT2515ABT5016ABT7517ABT10018ABT125本次试验选择萘乙酸(NAA)、吲哚乙酸(IBA)和生根粉(ABT)三种外源激素对紫甜无核葡萄插段形态学下端切口位置进行浸泡处理。每种激素设置六个浓度梯度如图表1-3所示，共18个处理，每个处理20个重复。试剂的配制：萘乙酸、吲哚丁酸均难溶于水，易溶于乙醇和弱碱性溶液，配制

15、时可加入少许碳酸氢钠或用乙醇溶解，再加水稀释。用分析天平称取1g萘乙酸(NAA)、吲哚乙酸(IBA)和生根粉(ABT)，用浓度为95%的乙醇在烧杯中溶解，加水稀释，溶液出现浑浊时，加入少许碳酸氢钠。倒入1000ml容量瓶中，加水定容，配制成1000mg/L的母液，避光保存。待试验时再根据表1-3所示配制相应浓度的萘乙酸(NAA)、吲哚乙酸(IBA)和生根粉(ABT)溶液使用9把处理好的插段放入配制好的溶液中浸泡8h，斜面向下，使溶液没过斜面切口，浸泡深度24cm。浸泡完成后插入土壤中，扦插深度为48cm。株距1012cm，行距2025cm，刺破地膜扦插，插段斜面向下稍向北倾斜插入土中，地上部分

16、保留12个芽眼，芽眼正对南方。每个处理区扦插20株，扦插完成后立即浇水，并挂上对应标签10，采用大水漫灌的方式将扦插苗床浇透，湿度保持在85%以上。在地膜插孔和插段之间小心覆土，务必使插段基部与土壤紧密结合，以利于切口吸收土壤中的水分11。1.4扦插后管理扦插完成后做好田间管理工作。及时为苗床补充水分，浇水次数和浇水量根据土壤墒情而定。人工祛除杂草，并注意在雨水多的时候排水，遇连日高温干旱土壤水分不足时于傍晚浇水保证基质含水量适当。1.5指标测定扦插完成60天后，进行各项指标的测量。为确保试验数据的准确性与真实性，试验完成后，挖出试验所需的全部紫甜无核葡萄插穗。统计360紫甜无核葡萄硬枝插段的

17、根数、根长、总根表面积、总根体积、根平均直径，生根率，计算根系效果指数。生根率=122.结果与分析2.1不同浓度NAA对紫甜无核葡萄扦插生根的影响表2-1不同浓度NAA对紫甜无核葡萄扦插生根的影响Table2-1 Effects of NAA concentration on rooting of purple sweet seedless grape处理Process平均根数Average root number平均根长（cm）Average root length平均总根表面积（cm2）Average total root surface area平均总根体积（cm3）Average to

18、tal root volume根平均直径（mm）Root mean diameter生根率Total root length平均根系效果指数Average root effect indexCK110.8548.21141.196.570.90100% 0.487dNAA5017.10 62.02 311.85 7.240.98 100% 0.877cNAA10021.18 46.27 336.64 9.301.09 95% 1.363bNAA15021.89 42.23 337.57 10.041.18 95% 1.289bNAA20021.63 43.44 448.80 17.511.58

19、 100% 1.803aNAA25020.67 45.19 442.59 17.221.49 90% 1.584b 注：本数据采用spss22数据分析软件进行处理，同列不同字母表示在5水平上差异显著。This data is processed by spss22 data analysis software. Different letters in the same column indicate significant differences at the 5% level.图2-1不同浓度NAA处理紫甜无核葡萄扦插根系效果指数变化图Fig.2-1 Exponential changes

20、 of root cutting effect of purple sweet seedless grape treated with different concentrations of NAA.从表2-1中我们可以看出：经NAA250处理的区组生根率是最低的，但不同浓度的NAA处理对紫甜无核葡萄扦插生根的效果均有显著影响。NAA200处理区组与NAA50处理区组、NAA100处理区组、NAA150处理区组、NAA250处理区组以及CK处理区组具有显著性差异，NAA100处理区组、NAA150处理区组、NAA200处理区组与NAA50处理区组、CK处理区组的根系效果指数有显著性差异，NAA

21、50处理区组与CK处理区组之间也有显著性差异，NAA100处理区组、NAA150处理区组和NAA200处理区组三个处理区组间根系效果指数无显著性差异。经过NAA处理过的区组根系数量、总根表面积均、总根体积和根平均直径均高于对照组，结果表明经过NAA处理的区组根系效果指数明显高于对照组，当NAA浓度为200mg/L时，总根表面积、总根体积、根平均直径和平均根系效果指数最高，生根率为100%。从图2-1中我们可以看出，随着NAA浓度的升高，根系效果指数也逐渐升高，在NAA浓度为150mg/L时有一定的下降趋势，但随之在200mg/L浓度时处达到最高峰，之后又随之下降。所以，用NAA处理紫甜无核葡萄

22、插段切口时，以200mg/L的浓度处理，根系效果指数最高，扦插效果最好。2.2不同浓度IBA对紫甜无核葡萄扦插生根的影响表2-2不同浓度IBA对紫甜无核葡萄扦插生根的影响Table 3. Effect of different IBA concentration on rooting of purple sweet seedless grape 处理Process平均根数Average root number平均根长（cm）Average root length平均总根表面积（cm2）Average total root surface area平均总根体积（cm3）Average total

23、 root volume根平均直径（mm）Root mean diameter生根率Total root length平均根系效果指数Average root effect indexIBA5016.40 56.08 336.75 10.03 1.17 100% 0.952cIBA10017.05 59.30 309.98 7.66 0.97 95% 0.832cIBA15019.90 43.26 318.37 9.63 1.20 100% 1.207bIBA20023.25 46.62 355.43 10.10 1.24 100% 1.441aIBA25019.35 37.81 283.01

24、 8.77 1.24 100% 1.194bCK214.50 52.01 255.29 7.00 1.08 100% 0.782c 注：本数据采用spss22数据分析软件进行处理，同列不同字母表示在5水平上差异显著。This data is processed by spss22 data analysis software. Different letters in the same column indicate significant differences at the 5% level.图2-2不同浓度IBAA处理紫甜无核葡萄扦插根系效果指数变化图图Fig.2-2 Exponenti

25、al changes of root cutting effect of purple sweet seedless grape treated with different concentrations of IBAA.从表2-1中我们可以看出：本次试验中，IBA200处理区组与IBA50处理区组、IBA100处理区组、IBA150处理区组、IBA250处理区组及CK处理区组的根系效果指数具有显著性差异，IBA150处理区组和IBA250处理区组与IBA50处理区组、IBA100处理区组和CK处理区组的根系效果指数有显著性差异。当IBA浓度为200mg/L时,平均根数最多，总根表面积最大，根

26、系效果指数最高，生根率为100%。从图2-2中我们可以看出所以，用IBA处理紫甜无核葡萄插段时与NAA紫甜无核葡萄插段处理时的根系效果指数变化相似，在IBA浓度为200mg/L时达到峰值，随着浓度升高再次下降。用IBA处理紫甜无核葡萄插段切口时，以200mg/L的浓度处理，根系效果指数最高，扦插效果最好。2.3不同浓度ABT对紫甜无核葡萄扦插生根的影响表2-3 不同浓度ABT对紫甜无核葡萄扦插生根的影响Table 2-3. Effects of different concentrations of ABT on rooting of purple sweet seedless grape.处

27、理Process平均根数Average root number平均根长（cm）Average root length平均总根表面积（cm2）Average total root surface area平均总根体积（cm3）Average total root volume根平均直径（mm）Root mean diameter生根率Total root length平均根系效果指数Average root effect indexCK216.15 75.6 315.9 6.57 0.82 100%0.672bABT2516.44 52.92 267.82 6.73 0.91 90%0.683b

28、ABT5017.75 48.27 257.75 6.23 0.96 100%0.910aABT7512.70 61.00 238.60 5.97 0.99 100%0.636bABT10013.60 52.12 208.55 4.94 0.97 100%0.644bABT12512.00 63.49 232.05 5.68 1.04 100%0.633b 注：本数据采用spss22数据分析软件进行处理，同列不同字母表示在5水平上差异显著。This data is processed by spss22 data analysis software. Different letters in t

29、he same column indicate significant differences at the 5% level.图2-3.不同浓度NAA处理紫甜无核葡萄扦插根系效果指数变化图Fig 2-3 exponential changes of root cutting effect of purple sweet seedless grape treated with different concentrations of NAA.从表2-3中我们可以看出：本次试验中，ABT50处理区组与ABT25处理区组、ABT75处理区组、ABT100处理区组、ABT125处理区组及CK处理区组根

30、系效果指数具有显著性差异。ABT25处理区组、ABT75处理区组、ABT100处理区组、ABT125处理区组和CK处理区组之间根系效果指数差异性不显著。当ABT浓度为50mg/L时，平均根数达到最大，根系效果指数达到最高，生根率为100%。从图2-3中我们可以看出，使用ABT处理时，浓度为50mg/L时根系效果指数达到峰值，所以，用ABT处理紫甜无核葡萄插段切口时，以50mg/L的浓度处理，根系效果指数最高，扦插效果最好。2.4三种激素对紫甜无核葡萄扦插生根的影响表2-4 三种激素对紫甜无核葡萄扦插生根的影响Table 2-4. Effects of three hormones on roo

31、ting of purple sweet seedless grape .处理Process平均根数Average root number平均根长（cm）Average root length平均总根表面积（cm2）Average total root surface area平均总根体积（cm3）Average total root volume根平均直径（mm）Root mean diameter生根率Total root length平均根系效果指数Average root effect indexNAA20021.63 43.44 448.80 17.51 1.58 100% 1.80

32、3aIBA20023.25 46.62 355.43 10.10 1.24 100% 1.441bABT5017.75 48.27 257.75 6.23 0.96 100% 0.910c 注：本数据采用spss22数据分析软件进行处理，同列不同字母表示在5水平上差异显著。This data is processed by spss22 data analysis software. Different letters in the same column indicate significant differences at the 5% level.图2-4三种激素最优处理的根系效果指数比

33、较图Fig 2-4 comparison of root effect index of optimal treatment with three hormones在本次试验中，通过设置不同激素及其不同浓度梯度对紫甜无核葡萄扦段经行处理计算其根系效果指数。从表2-4可看出：3种激素对促进紫甜无核葡萄根系效果指数均具有显著性影响。当以NAA处理紫甜无核葡萄扦段时，200mg/L为最适的浓度；以IBA处理时，200mg/L为最适的浓度；以ABT处理时，50mg/L为最适的浓度。NAA200处理区组、IBA200处理区组和ABT50处理区组，生根率都能达到100%，但两两之间根系效果指数均具有显著性

34、差异，就生根数量而言，IBA200处理区组生根量最大。ABT50处理区组的平均根长最高。通过图2-4可以明确看出NAA200处理区组的根系效果指数是最高的，IBA200处理区组次之，ABT100处理区组最低，其中以NAA200mg/L时平均总根表面积最大，平均总根体积最大，根系效果指数最高，综合来看NAA200mg/L时扦插生根效果最好。3.讨论植物体可以自发产生一定的植物激素供自身生长发育需要。离体的植物组织或器官，在进行无性繁殖时可通过预处理，使离体组织或器官的内源物质发生改变，减少或拮抗内部抑制物质的作用，促进生根13-16。扦插包括不定根的形成以及芽的分化启动。其中决定扦插是否成功的标

35、志就是根系是否长出。本试验以一年生紫甜无核葡萄健壮休眠硬枝为试验材料，确保离体材料具有成活的可能。以铺设地膜的土壤作为苗床，可以提供良好的土壤墒情。紫甜无核葡萄硬枝扦插后14天左右开始形成愈伤组织，20天左右开始发生不定根，插段先在底部切口皮层与形成层处形成白色膨大的愈伤组织，呈环状或成片连接，随后，愈伤组织向外形成白色突起，发生不定根。葡萄硬枝扦插生根过程中，不定根由愈伤组织中的薄壁组织分化而成，发现皮层生根现象，因此，可以初步确定葡萄硬枝扦插生根的类型为愈伤组织生根型，是易生根的类型。葡萄硬枝扦插以河沙为基质，保持较高的湿度，20天左右即可生根17。本试验在温外环境下，由于铺设地膜，管理适

36、当，土壤墒情适中，温度较高，墒情和扦插后14天左右开始形成愈伤组织，20天左右开始发生不定根，与正常情况相比基本吻合，分析原因可能是扦插时间较晚，室外温度较高，同时铺设地膜具有良好的保温保墒作用，影响作用较小。通过对表2-1,表2-2和表2-3的比较可知，本试验在NAA、IBA和ABT三种激素对紫甜无核葡萄扦插生根影响分析中，对其生根率的影响甚微，分析原因可能是因为葡萄扦插本身就比较容易成活，外源激素的刺激只是起到了辅助作用，加快了愈伤组织的生成，使其对根系效果指数影响能达到显著水平。尤其是200mg/LNAA处理区组相对于其他两种激素来说效果更为明显。植物通过扦插生根是一个非常复杂的过程，与

37、温度、光照、湿度等环境因素也有着密不可分的关系18。在图2-1，图2-2和图2-3中我们可以发现，当根系效果指数达到峰值后，随着激素浓度的升高，根系效果指数反而会下降。本试验由于未设置更高浓度的激素处理，所以无法判定高浓度的外源激素处理是否会对紫甜无核葡萄扦插生根产生抑制。其次外源激素的浓度与处理时间对紫甜无核葡萄生根成活的影响、处理后插段的动态生根势还需要进一步研究。还有外源激素对水、肥、气、热等胁迫的抗逆性是否有所提高，都有待于系统化地深入研究，以便为提高与促进紫甜无核葡萄的生产与管理技术服务。4.结论通过本次试验，初步得到以下结果：将用不同浓度的ABT、IAA、NAA激素处理的枝条生根情

38、况与清水处理的进行对照，结果表明：3种激素对促进葡萄扦插生根均有显著的促进作用，在NAA的5个浓度中200mg/L的处理效果最明显，在IBA的5个浓度中200mg/L的处理效果最明显，在ABT的5个浓度中50mg/L的处理效果最明显从生物学和经济学角度综合考虑，紫甜无核葡萄采用200mg/LNAA浸泡扦插，根系效果指数最好，苗木生长良好。技术容易掌握，育苗成本不高，有利于大面积推广。参考文献1张英,郑丽锦,朱玉菲,李绍星,张亚辉,王冬晨.葡萄晚熟无核新品种“紫甜无核”性状及栽培技术J.河北果树,2011(04):22-23.2卢媛.不同生长调节剂处理切花菊母株对其插穗扦插生根的影响D.南京农业

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41、对臭柏硬枝扦插的影响J.内蒙古农业大学学报,2007,(04):106-111.14Ruichi P,Zgijia Z.Synergistic effect of plant growth retardants and IBA on the formation of adventitions roots in hypocotyls cuttings of mung bean Plant Growth Regul,1994，(14):14-19.15孙会忠,宋月芹.刺柏的大田扦插育苗技术研究J.陕西农业科学,2006,(3):134-136.16Sen S M.Factors affecting

42、 arrival of infield rooting hardwood peach cutting.HortScien,1983,(3):324-325.17唐勇.葡萄育苗栽培技术M.山东:山东科学技术出版社,1998:129-130.18彭世勇,曹群.ABT、GGR生根粉和NAA对葡萄插条生根的影响J.北方果树,2004(02):11-12.1附录附 录附图1.紫甜无核葡萄扦插完成图Attached figure 1. purple sweet seedless grape cuttings completed figure附图2.NAA根系扫描图Attached figure 2.NAA

43、 root scanning diagram附图3.IBA根系扫描图Attached figure 3. Root scanning diagram of IBA附图3.ABT根系扫描图Attached figure 4.ABT root scanning diagram致谢致 谢本论文能够完成，首先要感谢的我的指导老师xxx。从论文的选题到整篇论文的完成都离不开任老师的悉心指导。任老师平时工作繁忙，但多次询问研究进程，及时帮我指出错误，拓宽思路，解决问题。任老师认真负责的工作态度，渊博的专业知识，严谨的科学作风，诲人不倦的高尚师德，朴实无华、平易近人的人格魅力对我影响深远。在此向任老师对我的

44、关心、帮助和教诲表示衷心的感谢！感谢我的母校和各位老师，聊城大学为我们提供了良好的学习和生活环境，学院为我们提供了便利的试验场地和相关器材。老师们兢兢业业、言传身教，他们不仅教给了我知识，也教给了我许多做人的道理，这些都将成为我人生的宝贵财富，使我受益终生。本论文的顺利完成离不开同学和朋友的关心和帮助，在开题、研究以及论文的写作的过程中，离不开马强和彭海旭等同学的帮助。在他们的帮助下，我受益良多。感谢这篇论文所涉及到的各位学者，本文引用了数位学者的研究文献，如果没有各位学者的研究成果的帮忙和启发，我将很难完成本篇论文的写作。最后，特别感谢一直关心、爱护、支持我的家人们，他们给予我的全力支持和无私关爱，使我能够专心于学习研究，这些都是我顺利完成学业并不断进取的动力！