丙酮丁醇梭菌复合诱变及发酵废弃物原料产生物丁醇的研究.docx
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1、丙酮丁醇梭菌复合诱变及发酵废弃物原料产生物丁醇的研究 农业废弃物为原料进行丁醇发酵,包括木薯、玉米秸秆等4。笔者采纳紫外和磁场与Fe2+共同诱变的复合诱变选育丙酮丁醇高产突变株,并探讨了运用蕨根、苹果渣、餐厨废弃物进行发酵,同时在蕨根中添加高山被孢霉干菌体进行了共同发酵,以期找寻较好的替代原料。 1材料与方法 1.1材料 1.1.1菌种。菌株Clostridium acetobutylicum CGMCC 1.0134购自中国微生物菌种保藏中心。 1.1.2培育基。 PYG培育基:多胨5.0 g,胰胨5.0 g,酵母提取物10.0 g,葡萄糖10.0 g,盐溶液40 mL,蒸馏水960 mL,
2、琼脂5.0 g,pH 6.57.0,121 灭菌20 min。 筛选培育基 :TYA培育基添加少量刃天青。筛选培育基 :PYG培育基中的葡萄糖用可溶性淀粉替换,添加少量2-脱氧-D-葡萄糖5。 种子培育基:5%的玉米醪。发酵培育基:15%的玉米醪6。 1.2方法 1.2.1紫外诱变。 将培育48 h平板上的菌全部刮下,置于铺满玻璃珠的50 mL 0.9%生理盐水中,得30 mL原始单孢子悬液。将单孢子悬液用0.9%生理盐水或无菌水调整浓度为1.5108个/mL。加3 mL单孢子悬液于直径9 cm平皿中,开盖置于15 W紫外灯30 cm处照耀,在暗室边搅拌边照耀0、90、180、273、360
3、s,用黑布包袱,置于黑暗处至少2 h。诱变结束后,用无菌水稀释孢子悬液至浓度为110-5、110-6、110-7个/mL,混合匀称,每个浓度菌悬液各涂3块平板,37 培育5 d,统计菌落数并计算致死率6。 1.2.2磁场诱变和Fe2+共同诱变。 将培育48 h平板上的菌全部刮下,置于铺满玻璃珠的50 mL 0.9%生理盐水中,得30 mL原始单孢子悬液。将单孢子悬液用0.9%生理盐水或无菌水调整浓度为1.5108个/mL。单孢子菌悬液分别加入0.001%、0.010%、0.050%、0.101%、1.000%的Fe2+溶液,置于0.5 T磁场中37 摇床培育进行诱变。诱变结束后,用无菌水稀释孢
4、子悬液至浓度为110-5、110-6、110-7个/mL,每个浓度菌悬液各涂3块平板,37 培育5 d,统计菌落数并计算致死率。CK:菌悬液干脆在37 下厌氧培育3 d;CK1:菌悬液置于0.5 T磁场中3 h,然后置于37 下厌氧培育3 d;CK2:向菌悬液分别加入质量分数为0001%、0010%、0.050%、0.101%、1.000%的Fe2+溶液,再置于05 T磁场中3 h,然后置于37 厌氧培育3 d。 1.2.3高产突变菌株的可视化筛选。 在筛选培育基 上进行初筛,将涂布后的平板倒置于厌氧培育箱中,37 培育73 h,挑取生长较好的单菌落接着培育,进行复筛。 1.2.4遗传稳定性试
5、验。 将筛选得到的高产丁醇菌接到种子培育基中,37 厌氧培育3 d作为F1代,然后连续继代6次,得到F2、F3、F4、F5、F6、F7代,并且在继代的同时将各代菌株接种到发酵培育基中,37 厌氧培育73 h,采纳气相色谱测定发酵液中丙酮、丁醇和乙醇含量,依据测定结果推断其稳定性。 1.2.5发酵液中溶剂及有机酸浓度测定方法。 采纳气相色谱测定。气相色谱条件:色谱柱为安捷伦HP-INNOWAX,30 m0.25 mm;检测器为FID;N2为载气,流速为35 mL/min,H2流速为30 mL/min,空气流速为400 mL/min;初始柱温为40 ,升至73 ,保留1 min,升至140 ,然后
6、升至200 ;进样口温度为160 ;检测器温度为220 ;进样量为0.4 L,内标法定量7。 1.2.6发酵液残糖测定。 采纳SBA-40D生物传感分析仪测定葡萄糖浓度。 1.2.7生物量测定。 采纳TCA反复冻溶法测定。 1.2.8致死率計算。 致死率=诱变前活菌数-诱变后活菌数诱变前活菌数101% 2结果与分析 2.1诱变及突变株的筛选 2.1.1紫外诱变剂量的选择。 由图1可知,紫外照耀时间增加,菌体的致死率也随之上升。在初期致死率上升较快,但在60 s之后,随着照耀时间的增加菌体致死率改变幅度渐渐下降。60 s时,致死率已达85.0%;150 s时,致死率达1016%。依据阅历,致死率
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